Anti-Integrin β 3 Rabbit Antibody [P12C15]

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生物描述

特异性

Anti-Integrin β 3 Rabbit Antibody [P12C15] 可检测内源性 Integrin β 3 总蛋白水平。

背景 整合素β3是跨膜受体整合素家族的关键亚基,介导细胞粘附于细胞外基质(ECM),并跨质膜双向传递信号。它通常与αV或αIIb亚基配对形成αVβ3和αIIbβ3整合素,这些整合素在血小板聚集(αIIbβ3)、血管生成、细胞迁移和存活(αVβ3)等多种生物学过程中发挥重要作用。整合素β3具有一个较大的胞外结构域,包括负责配体结合的βA(I样)结构域、一个混合结构域、一个丛蛋白-信号素-整合素(PSI)结构域以及多个I-EGF结构域,随后是一个跨膜区和一个与胞内蛋白相互作用的短胞质尾。跨膜结构域对于α/β异二聚化和信号传递至关重要。 β3整合素在非活性状态下呈弯曲构象,但在活化后会发生剧烈的构象变化,在I-EGF1/2“膝盖”处伸展,并发生混合结构域向外摆动,从而实现高亲和力配体结合和腿部分离。活化受由内向外信号传导的严格调控,其中踝蛋白和kindlin等蛋白质与胞质尾部结合,引发构象从低亲和力状态向高亲和力状态转变。由外向内信号传导在配体结合后进行,导致细胞骨架重排和基因表达调控。β3整合素还参与破骨细胞的骨吸收、免疫细胞运输和肿瘤进展。其活性受二价阳离子(Ca²⁺、Mg²⁺、Mn²⁺)、胞质残基的磷酸化以及与其他膜蛋白的相互作用调控。基因变异,例如PSI结构域中的Leu33Pro多态性,与免疫反应改变和血栓形成风险增加相关。β3整合素失调与血栓形成、癌症转移和炎症性疾病有关。

使用信息

抗体应用 WB, IP, FCM 稀释比例
WB IP FCM
1:1000 1:20 1:20
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit MW 87 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data