BRCA1 Antibody [N12F20]

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生物描述

特异性 BRCA1 Antibody [N12F20] 可检测内源性 BRCA1 总蛋白水平。
背景 BRCA1(乳腺癌 1)是由遗传性乳腺癌和卵巢癌综合征中发生突变的抑癌基因编码的,其主要功能是作为同源重组 (HR) 修复的支架协调器,通过将 PALB2、BRCA2 和 RAD51 募集到双链断裂处,同时在 S 期和 G2 期抑制易错的非同源末端连接 (NHEJ),从而通过细胞周期检查点激活和染色质重塑来维持基因组稳定性。 BRCA1(约 1863 个氨基酸)具有 N 端 RING 结构域,其中包含 Cys3HisCys4 基序(Cys24、Cys27、Cys37 催化 E2 泛素连接酶活性),中央 BRCT 结构域包含磷酸丝氨酸结合口袋,其中 Ser988 和 Ser1423 识别位点是保守的,并且具有多个 SQ/TQ 磷酸化位点(例如 ATM/ATR 靶向的 Ser1387 和 Ser1524),这些位点在 DNA 损伤反应期间动态调节蛋白质相互作用。 BRCA1通过泛素化组蛋白H2A来募集修复因子,从而调控同源重组(HR)修复;它磷酸化CtIP以促进末端切除和3'单链DNA尾的形成,从而促进RAD51的加载;它通过Chk1/2激活G2/M期检查点;并通过与p53和BARD1的相互作用转录抑制增殖基因。BRCA1在G1/S期晚期(Aurora A/CDK2靶位点Ser308和Ser1497)发生过度磷酸化,在M期达到峰值,随后在G1期早期发生部分去磷酸化。BRCA1的失活突变(已鉴定超过3000种)会消除HR修复能力,导致双链断裂的积累、基因组不稳定和肿瘤发生,并增加终生罹患乳腺癌和卵巢癌的风险。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:50
反应性 Human
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 220 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:250 mA, 180 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data