CBS Antibody [J23E1]

目录号:F5031

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生物描述

特异性 CBS Antibody [J23E1] 可检测内源性 CBS 总蛋白水平。
背景 胱硫醚β-合成酶 (CBS) 是转硫途径中限速的吡哆醛5'-磷酸 (PLP) 依赖性酶。它催化丝氨酸羟基被同型半胱氨酸β-取代,生成胱硫醚,从而将硫从蛋氨酸转移到半胱氨酸的生物合成途径,并通过其他半胱氨酸依赖性反应生成硫化氢 (H₂S)。人 CBS 形成同源四聚体,其 N 端包含一个血红素结合域,该域结合铁卟啉以感知氧化还原和 CO 的变化;一个中央 PLP 催化域,其中包含活性位点,赖氨酸 47 在此形成席夫碱中间体,并通过静电相互作用稳定碳负离子或氨基丙烯酸酯类;以及 C 端串联的 CBS 结构域,该结构域结合 S-腺苷甲硫氨酸 (AdoMet),通过增强四聚体的刚性和提高 PLP 位点的可及性来实现变构激活。 CBS维持同型半胱氨酸稳态,这对血管健康至关重要。在蛋氨酸浓度较高的情况下,AdoMet诱导的激活可增强同型半胱氨酸的代谢通量。血红素通过改变PLP互变异构体来调节酶活性,从而在氧化应激下抑制酶的活性。同时,H₂S的产生作为一种气体信号分子,通过硫氢化作用调节血管舒张、神经调节和细胞保护,其作用靶点包括K(ATP)通道和蛋白激酶。该酶的四聚体组装使调节性CBS结构域远离催化核心,从而传递构象变化,重新定位活性位点残基(如赖氨酸和精氨酸),以在β-取代过程中稳定两性离子中间体。CBS缺乏会导致同型半胱氨酸尿症,进而引发高同型半胱氨酸血症、血栓栓塞、晶状体脱位、骨骼异常以及认知障碍,这些都归因于毒性同型半胱氨酸的积累以及H₂S和谷胱甘肽合成受损。致病突变通常会破坏四聚体化、血红素或PLP结合或AdoMet反应性。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 61 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

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