CBX8 Antibody [E24E8]

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生物描述

特异性 CBX8 Antibody [E24E8] 可检测内源性 CBX8 总蛋白水平。
背景 CBX8,即染色质盒蛋白同源物8,是多梳抑制复合物1 (PRC1) 中CBX家族的成员,它与RING1和BMI1等蛋白协同作用,在发育和干细胞自我更新过程中维持可遗传的基因沉默。作为一种典型的H3K27me3读取蛋白,CBX8将PRC1募集到特定的染色质区域,从而确保稳定的转录抑制。CBX8包含一个N端染色质结构域,该结构域形成一个用于结合H3K27me3的芳香笼;一个与DNA小沟相互作用的AT钩基序;以及一个C端区域,该区域负责PRC1的组装以及将其定位到细胞核内的多梳蛋白组(PcG)小体。 CBX8的主要功能围绕动态染色质抑制展开:CBX8结合H3K27me3标记位点,通过多价PRC1相互作用压缩染色质,并泛素化组蛋白H2AK119以抑制RNA聚合酶II的活性。在胚胎干细胞分化过程中,CBX8促进PRC1-CBX7向PRC1-CBX8的转变,从而支持谱系特异性基因(例如Hox基因簇)的强效激活。CBX8调节INK4A-ARF基因座的抑制,使细胞能够绕过癌基因诱导的衰老,通过解除细胞周期蛋白基因的抑制来促进细胞增殖,并与BMI1和RING1B共定位于核内PcG小体中。疾病相关性包括 CBX8 在 MLL-AF9 白血病中的作用(CBX8 对 HOX 基因的维持至关重要)、CBX8 参与成纤维细胞永生化以及 CBX8 对造血干细胞自我更新的影响(CBX8 过表达可驱动衰老旁路,而 CBX8 敲低则会导致 G1 期阻滞)。

使用信息

抗体应用 WB, IP, ChIP 稀释比例
WB IP CHIP
1:1000 1:200 1:50
反应性 Human, Mouse, Rat, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 65 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data