Cyclophilin A Antibody [H11E16]

目录号：F2404

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生物描述

特异性 Cyclophilin A Antibody [H11E16] 可检测内源性 Cyclophilin A 总蛋白水平。
背景 环孢亲和素A (CypA) 属于免疫亲和素家族的肽基脯氨酰顺反异构酶 (PPIase)，能够催化脯氨酸肽键的相互转化，从而加速蛋白质折叠和构象动力学。该蛋白由165个氨基酸组成，具有八条反平行β折叠桶状结构，两侧各有一个α螺旋。其疏水性活性位点口袋（包含Arg55、Phe60、Gln63和Lys82）能够协调底物脯氨酸残基，从而实现高效的异构化。CypA在胞质溶胶中含量丰富，在病毒脱壳和核输入过程中，它作为分子伴侣辅助HIV-1 Gag p55等底物蛋白，促进病毒复制。环孢素A抑制其PPIase活性，阻断钙调磷酸酶-NFAT信号通路，从而抑制T细胞细胞因子的产生。在氧化应激或炎症条件下，CypA被分泌，与内皮细胞上的CD147受体结合，激活ERK1/2和NF-κB通路。这上调了黏附分子（VCAM-1、ICAM-1）、趋化因子（CXCL8、IL-1）和活性氧（ROS）的表达，从而增强炎症期间的白细胞募集。在血管内皮细胞中，胞外CypA通过抑制KLF2来抑制eNOS，促进LDL氧化和清道夫受体的摄取，并诱导基质金属蛋白酶（MMPs）的表达，从而导致动脉粥样硬化斑块不稳定。CypA还调节感染结果：它通过异构化衣壳环或影响先天免疫来限制某些病毒，但HIV利用CypA促进衣壳成熟，HCV则利用CypA逃避细胞凋亡。线粒体CypA调节线粒体DNA（mtDNA）的稳定性和呼吸链组装，而核内CypA则影响前体mRNA的剪接和端粒的维持。CypA过表达通过CD147/FAK信号通路驱动细胞增殖、迁移和转移，促进血管生成（通过VEGF），并通过稳定突变型p53或XIAP赋予细胞化疗耐药性。类风湿性关节炎滑膜成纤维细胞分泌CypA以加剧IL-6/TNF炎症风暴，心肌梗死后血浆CypA水平升高，且与损伤严重程度相关。

使用信息

抗体应用 WB, IP, IHC, FCM 稀释比例
WB IP IF FCM
1:1000 1:100 1:1000 1:2000
反应性 Human
抗体类型 Mouse Monoclonal Antibody MW 18 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)		 -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤：
 
样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
 
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件：200 mA, 60 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
 
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:500），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；
2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
 
IHC
实验步骤：
 
脱蜡/补液
1. 脱蜡/水合切片：
2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。
3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。
4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。
5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾； 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
 
染色
1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。
2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
13. 如果需要，用苏木精复染切片。
14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒； 在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒； 在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。
16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
 

Application Data

WB

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