Flotillin 2 Antibody [A21G15]

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生物描述

特异性 Flotillin 2 Antibody [A21G15] 可检测内源性 Flotillin 2 总蛋白水平。
背景 Flotillin-2 (FLOT2) 是 flotillin/band 7/stomatin 蛋白家族的成员,作为一种整合膜支架蛋白,它能在质膜和内体区室中自组装形成脂筏微区。其 N 端跨膜结构域和含有保守 stomatin 同源序列的中央 flotillin 结构域介导其与 flotillin-1 的异源寡聚化,从而形成稳定的、不依赖于 caveolin 的脂质平台,该平台对于组织信号转导至关重要。FLOT2(约 428 个氨基酸)具有 N 端疏水锚定区、用于寡聚化的中央 SPFH 结构域(残基约 70-140)以及用于细胞骨架偶联的 C 端带电区域,这些结构共同作用形成刚性膜曲率,从而在缺乏 caveolin 的情况下募集信号复合物。 FLOT2通过非网格蛋白依赖性途径内化EGFR、IGFR和受体酪氨酸激酶,从而调控受体的内吞和转运;通过Ras纳米簇集协调MAPK/ERK信号通路以驱动细胞增殖;通过Dishevelled募集调节Wnt/β-catenin信号通路,影响干性和分化;并通过flotillin-actin连接蛋白调控肌动蛋白重塑,从而控制伪足的形成和细胞迁移。FLOT2维持神经元和肌肉细胞膜蛋白组的稳态和极性转运;病理上,其上调通过增强信号传导和转运,驱动EGFR依赖性癌症(如非小细胞肺癌和乳腺癌)的发生;通过APP和tau蛋白的区室化与阿尔茨海默病相关;并通过胰岛素受体脱敏与代谢综合征相关。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000-1:10000 1:40
反应性 Human
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 27 kDa,47 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 60 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

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