G Protein Goα Antibody [K6C9] Datasheet

生物描述

特异性	G Protein Goα Antibody [K6C9] 可检测内源性 G Protein Goα 总蛋白水平。
背景	G蛋白Goα是异源三聚体Go蛋白的α亚基，是脑内含量最丰富的G蛋白，在神经元信号转导中发挥着核心作用。它由两个主要结构域组成：一个G结构域，与其他小GTP酶类似，能够结合并水解GTP；以及一个独特的螺旋结构域，将GTP分子包裹在蛋白核心内。受体激活后，Goα将GDP交换为GTP，触发三个开关区域（开关I、II和III）的构象变化，从而激活Goα并促进其从Gβγ二聚体中解离。与Giα不同，Goα并不直接调节腺苷酸环化酶，而是通过下游效应分子（如Necdin蛋白和转录因子PLZF）来调节神经元分化和信号传导。Goα的激活还会释放游离的Gβγ亚基，这些亚基独立地参与下游信号通路。 Goα 存在多种亚型（GoA、GoB、GoC），它们由选择性剪接和翻译后修饰产生，在受体和效应分子相互作用方面存在差异，从而使其信号传导功能多样化。C 端附近的脱酰胺作用调节受体识别，为调控细胞反应提供了一种机制。Goα 参与神经元中受体调节的磷脂酶 C 通路，对细胞信号传导和神经生理过程至关重要。

特异性

G Protein Goα Antibody [K6C9] 可检测内源性 G Protein Goα 总蛋白水平。

背景

G蛋白Goα是异源三聚体Go蛋白的α亚基，是脑内含量最丰富的G蛋白，在神经元信号转导中发挥着核心作用。它由两个主要结构域组成：一个G结构域，与其他小GTP酶类似，能够结合并水解GTP；以及一个独特的螺旋结构域，将GTP分子包裹在蛋白核心内。受体激活后，Goα将GDP交换为GTP，触发三个开关区域（开关I、II和III）的构象变化，从而激活Goα并促进其从Gβγ二聚体中解离。与Giα不同，Goα并不直接调节腺苷酸环化酶，而是通过下游效应分子（如Necdin蛋白和转录因子PLZF）来调节神经元分化和信号传导。Goα的激活还会释放游离的Gβγ亚基，这些亚基独立地参与下游信号通路。 Goα 存在多种亚型（GoA、GoB、GoC），它们由选择性剪接和翻译后修饰产生，在受体和效应分子相互作用方面存在差异，从而使其信号传导功能多样化。C 端附近的脱酰胺作用调节受体识别，为调控细胞反应提供了一种机制。Goα 参与神经元中受体调节的磷脂酶 C 通路，对细胞信号传导和神经生理过程至关重要。

使用信息

抗体应用

WB

稀释比例

WB

1:3000

反应性

Rat, Bovine, Human, Guinea pig, Mouse

抗体类型

Mouse Monoclonal Antibody

MW

39 - 42 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:3000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 60 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:3000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: Mouse brain