GRK 2/3 (βARK 1/2) Antibody [K24G8]

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生物描述

特异性 GRK 2/3 (βARK 1/2) Antibody [K24G8] 可检测内源性 GRK 2/3 (βARK 1/2) 总蛋白水平。
背景 G蛋白偶联受体 (GPCR) 是膜蛋白家族中最大、最多样化的家族之一,负责通过激活各种第二信使途径将细胞外信号转导至细胞内反应。GPCR 信号的精确调控对于维持细胞响应至关重要,其终止主要通过 G 蛋白偶联受体激酶 (GRK) 及其衔接蛋白 β-arrestins 介导的同源脱敏来实现。与配体结合后,GRK 磷酸化激活的 GPCR,为 β-arrestins 提供锚定位点,进而促进受体内化、信号终止和受体运输。GRK 家族包含六种亚型 (GRK1-6),每种亚型都表现出不同的底物偏好、细胞定位和调控机制。其中,GRK2 和 GRK3,也称为 β-肾上腺素能受体激酶(βARK1 和 βARK2),在多种受体系统的调控中发挥关键作用。 GRK2 和 GRK3 的一个显著特征是其 C 末端区域存在一个普莱克底物同源性 (PH) 结构域——这是一种在多种信号传导和细胞骨架蛋白中发现的保守结构基序。该结构域介导与异源三聚体 G 蛋白的 Gβγ 亚基的直接相互作用,从而增强 GRK 的催化活性并促进其转位至质膜,使其能够有效地进行受体磷酸化。此外,带负电荷的膜磷脂已被证明能够选择性结合并调节 GRK2 和 GRK3 的活性,影响它们磷酸化底物(例如 hm2 毒蕈碱乙酰胆碱受体 (mAChR),这是 GRK 介导脱敏的典型模型)的能力。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB
1:200 - 1:2000
反应性 Rat, Mouse, Bovine, Chicken, Human, Rabbit, Pig
抗体类型 Mouse Monoclonal Antibody MW 80 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: 3T3, Lane 2: A431, Lane 3: Hela