Hamartin/TSC1 Antibody [N1E19]

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生物描述

特异性 Hamartin/TSC1 Antibody [N1E19] 可检测内源性 Hamartin/TSC1 总蛋白水平。
背景 肿瘤抑制基因TSC1的蛋白产物Hamartin与结节蛋白(TSC2)形成异二聚体GTP酶激活蛋白复合物,该复合物负调控mTORC1信号通路。该复合物加速Rheb蛋白上的GTP水解,抑制下游合成代谢过程,例如通过S6K1磷酸化和5'TOP mRNA翻译抑制蛋白质合成,尤其是在生长因子、营养或能量胁迫条件下。Hamartin包含一个N端卷曲螺旋结构域,该结构域通过静电相互作用介导与TSC2的异二聚化;一个中央Rho激活结构域,该结构域含有关键的精氨酸和赖氨酸基序,这些基序有助于通过ERM蛋白(如ezrin、radixin和moesin)锚定到肌动蛋白细胞骨架上;以及多个磷酸化位点,这些位点在G2/M期被CDK1靶向,从而调节复合物的稳定性。 TSC1-TSC2复合物整合来自溶酶体AKT、AMPK和REDD1等通路的多种信号,抑制Rheb-GTP,从而阻止mTORC1的募集和激活,维持细胞静止状态。除了TSC2之外,错构瘤蛋白(hamartin)还能促进黏着斑的组装和RhoA的激活,从而支持细胞黏附、迁移、神经元中间丝锚定和囊泡运输。错构瘤蛋白在器官发生过程中对细胞增殖的调控至关重要。TSC1的缺失会导致mTORC1持续过度激活,进而导致脑(如皮质结节和室管膜下巨细胞星形细胞瘤)、肾(血管平滑肌脂肪瘤)、心脏(横纹肌瘤)和皮肤中错构瘤的形成。致病性突变通常会破坏TSC2的结合或卷曲螺旋结构域的稳定性,导致结节性硬化症,这是一种常染色体显性遗传疾病,其特征是癫痫、自闭症和肿瘤的发生。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:50
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 150-170 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data