Histone H3 (mono methyl Lys27) Antibody [G24J14] Datasheet

生物描述

特异性	Histone H3 (mono methyl Lys27) Antibody [G24J14] 仅检测 Lys27 单甲基化的内源性组蛋白 H3 蛋白水平。
背景	组蛋白H3第27位赖氨酸单甲基化（H3K27me1）是一种关键的翻译后修饰，它将一个甲基添加到组蛋白H3第27位赖氨酸的ε-氨基上。组蛋白H3是一种核心核小体蛋白，与H2A、H2B和H4形成八聚体，用于包装DNA。这种修饰发生在柔性N端尾部（氨基酸1-40）和球状组蛋白折叠结构（氨基酸94-123）上，由PRC2/EZH2（优先进行单甲基化而非三甲基化）或SETD2拮抗途径进行。在发育和分化过程中，H3K27me1标记基因体、增强子和双价启动子处的染色质处于允许、活跃或准备状态，这与抑制性的H3K27me3标记形成对比。甲基化的K27嵌入疏水性H3-H3界面口袋（受Ala28和Pro30调控），可与H3K36me3共存，增强核小体流动性和RNA聚合酶II的结合（与紧密结合PRC1的H3K27me3状态不同），通过PHD或Tudor基序（例如BPTF，而非CBX染色质结构域）募集阅读蛋白，并可被JMJD3/UTX去甲基化酶逆转（主要作用于二甲基化和三甲基化，但也作用于单甲基化）。H3K27me1驱动转录激活和延伸、增强子-启动子环化、高基因表达、胚胎发生和红系分化过程中的基因组编程，并在谱系特异性位点拮抗H3K27me3。 H3K27me1 失调，例如通过 PRC2 突变将单甲基化与三甲基化平衡转移，是癌症（包括白血病和儿童肿瘤）和发育障碍的根本原因；使用 EZH2 抑制剂治疗可以提高 H3K27me1 并激活抑癌基因。

特异性

Histone H3 (mono methyl Lys27) Antibody [G24J14] 仅检测 Lys27 单甲基化的内源性组蛋白 H3 蛋白水平。

背景

组蛋白H3第27位赖氨酸单甲基化（H3K27me1）是一种关键的翻译后修饰，它将一个甲基添加到组蛋白H3第27位赖氨酸的ε-氨基上。组蛋白H3是一种核心核小体蛋白，与H2A、H2B和H4形成八聚体，用于包装DNA。这种修饰发生在柔性N端尾部（氨基酸1-40）和球状组蛋白折叠结构（氨基酸94-123）上，由PRC2/EZH2（优先进行单甲基化而非三甲基化）或SETD2拮抗途径进行。在发育和分化过程中，H3K27me1标记基因体、增强子和双价启动子处的染色质处于允许、活跃或准备状态，这与抑制性的H3K27me3标记形成对比。甲基化的K27嵌入疏水性H3-H3界面口袋（受Ala28和Pro30调控），可与H3K36me3共存，增强核小体流动性和RNA聚合酶II的结合（与紧密结合PRC1的H3K27me3状态不同），通过PHD或Tudor基序（例如BPTF，而非CBX染色质结构域）募集阅读蛋白，并可被JMJD3/UTX去甲基化酶逆转（主要作用于二甲基化和三甲基化，但也作用于单甲基化）。H3K27me1驱动转录激活和延伸、增强子-启动子环化、高基因表达、胚胎发生和红系分化过程中的基因组编程，并在谱系特异性位点拮抗H3K27me3。 H3K27me1 失调，例如通过 PRC2 突变将单甲基化与三甲基化平衡转移，是癌症（包括白血病和儿童肿瘤）和发育障碍的根本原因；使用 EZH2 抑制剂治疗可以提高 H3K27me1 并激活抑癌基因。

使用信息

抗体应用

WB, IP

稀释比例

WB	IP
1:1000	1:50

反应性

Human, Mouse, Rat, Monkey

抗体类型

Rabbit Monoclonal Antibody

MW

17 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 60 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

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Lane 1: Hela, Lane 2: C2C12