Influenza A virus (H5N1/HA1) Antibody [L10F5] Datasheet

生物描述

特异性	Influenza A virus (H5N1/HA1) Antibody [L10F5] 可检测内源性 Influenza A virus (H5N1/HA1) 总蛋白水平。
背景	甲型流感病毒（H5N1/HA1）是血凝素（HA）的受体结合N端亚基，血凝素是一种I类病毒融合糖蛋白，以HA0前体合成，并由宿主弗林蛋白酶在多碱性位点（高致病性H5N1的特征）切割成二硫键连接的HA1（残基~1-328）和HA2（~221个氨基酸）。 HA1 在 HA2 茎部形成一个远离细胞膜的球状头部结构域，该结构域由具有混合 α/β 基序的反平行 β 折叠组成，包含唾液酸受体结合位点（RBS，关键残基 Gln226 和 Gly228 决定 α2,3-糖苷键的偏好性）、定义抗原位点的 130 环/220 环/190 螺旋结构，以及调节免疫原性和稳定性的 N-连接糖链（约 7 个位点）。三聚体 HA1 介导其与宿主呼吸道上皮细胞唾液酸化糖链的结合，从而触发受体介导的内吞作用；内体酸化（pH 5.0-5.5）诱导 HA1 与 HA2 不可逆解离，暴露 HA2 融合肽，使其与病毒-内体膜融合，并将病毒核糖核蛋白 (vRNP) 释放到细胞质中。 H5N1 HA1 增强的酸稳定性和多碱基裂解使其能够进行系统性复制，具有高毒力（60% 的人类病死率），并通过受体结合适应（例如 Q226L）具有人畜共患潜力。

特异性

Influenza A virus (H5N1/HA1) Antibody [L10F5] 可检测内源性 Influenza A virus (H5N1/HA1) 总蛋白水平。

背景

甲型流感病毒（H5N1/HA1）是血凝素（HA）的受体结合N端亚基，血凝素是一种I类病毒融合糖蛋白，以HA0前体合成，并由宿主弗林蛋白酶在多碱性位点（高致病性H5N1的特征）切割成二硫键连接的HA1（残基~1-328）和HA2（~221个氨基酸）。 HA1 在 HA2 茎部形成一个远离细胞膜的球状头部结构域，该结构域由具有混合 α/β 基序的反平行 β 折叠组成，包含唾液酸受体结合位点（RBS，关键残基 Gln226 和 Gly228 决定 α2,3-糖苷键的偏好性）、定义抗原位点的 130 环/220 环/190 螺旋结构，以及调节免疫原性和稳定性的 N-连接糖链（约 7 个位点）。三聚体 HA1 介导其与宿主呼吸道上皮细胞唾液酸化糖链的结合，从而触发受体介导的内吞作用；内体酸化（pH 5.0-5.5）诱导 HA1 与 HA2 不可逆解离，暴露 HA2 融合肽，使其与病毒-内体膜融合，并将病毒核糖核蛋白 (vRNP) 释放到细胞质中。 H5N1 HA1 增强的酸稳定性和多碱基裂解使其能够进行系统性复制，具有高毒力（60% 的人类病死率），并通过受体结合适应（例如 Q226L）具有人畜共患潜力。

使用信息

抗体应用

WB, ELISA

稀释比例

WB

1:3000

反应性

Influenza A

抗体类型

Mouse Monoclonal Antibody

MW

64 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:3000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:3000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: H5N1 recombinant protein