Lin28B Antibody (Rabbit mAb) [J18A6]

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生物描述

特异性 Lin28B Antibody (Rabbit mAb) [J18A6] 可检测内源性 Lin28B 总蛋白水平。
背景 LIN28B 是 Lin28 家族中进化保守的 RNA 结合蛋白,它包含一个 N 端冷休克结构域和一对 C 端 CCHC 锌指基序,它作为转录后调节因子,抑制抑癌 let-7 微 RNA 家族的成熟,同时结合和调节其他含有 GGAG 的前体 miRNA,以控制发育时间、干性和致癌信号传导。冷休克结构域和锌指结构域协同作用,识别前体let-7及其相关前体miRNA末端环中的5′‐GGAG‐3′基序,形成稳定的复合物,阻断Dicer酶的加工,并在许多情况下募集末端尿苷酰转移酶(如ZCCHC11/TUT4)催化这些前体的3′尿苷酰化及其后续降解,从而降低成熟let-7的水平,并解除对let-7靶mRNA(包括RAS、MYC和HMGA2)的抑制。LIN28B还能结合初级let-7转录本,并将初级let-7隔离在核仁区室中,使其远离微处理器复合物,从而为let-7的生物合成提供额外的上游检查点,并增强发育组织和干细胞群中let-7的低表达,以维持其多能性和增殖能力。在正常生理条件下,LIN28B 在胚胎和胎儿组织中表达最高,包括胎盘、胎肝和发育中的肠道。在这些组织中,LIN28B 对 let-7 的抑制作用促进细胞生长、代谢活动和分化延迟,从而建立起一条 LIN28B-let-7 轴,该轴如同一个“发育计时器”,调控细胞从增殖状态向分化状态的转变。在癌症中,LIN28B 在多种实体瘤和血液系统恶性肿瘤中均存在过表达。在小鼠模型中,肠道靶向表达 LIN28B 会导致肠道肥大、隐窝扩张和腺癌形成,而这些过程均依赖于 let-7 的抑制。这表明,LIN28B 在成人组织中的持续活性会将其发育生长程序转化为致癌驱动因子,其机制是通过长期解除 let-7 介导的细胞周期和存活信号通路的抑制。 LIN28B 还具有不依赖于 let-7 的作用:它能结合参与代谢、细胞周期调控和上皮-间质转化的特定 mRNA,增强其翻译或稳定性,并影响癌症干细胞特性、代谢重编程和免疫逃逸。因此,LIN28B 将 miRNA 通路调控与 mRNA 水平的直接调控相结合,从而协调多种癌症特征,包括干性、增殖、迁移和治疗耐药性。LIN28B 的表达受转录因子(例如 MYC)的调控,MYC 可诱导 LIN28B 表达,从而增强 let-7 的抑制作用并放大 MYC 驱动的转录程序;此外,LIN28B 的 3′ UTR 结合的非编码 RNA 也对其表达进行调控,形成反馈回路。在这些回路中,LIN28B、let-7、MYC 和其他 miRNA 相互影响彼此的水平和活性,从而根据具体情况稳定干细胞样致癌状态或更分化的状态。总的来说,这些研究结果表明 LIN28B 是一种冷休克和锌指 RNA 结合蛋白,它能识别 pri- 和 pre-miRNA 中的 GGAG 基序,阻断其加工并促进尿苷酸化介导的衰变,抑制 let-7 肿瘤抑制网络,并在发育和肿瘤发生过程中协调更广泛的 miRNA 和 mRNA 靶标调控程序,从而决定细胞特性、生长和转移潜能。这使得 LIN28B 成为一种机制丰富的靶点,可用于旨在恢复 let-7 功能或破坏 Lin28 驱动的癌症干性的干预措施。

使用信息

抗体应用 WB, IP, IF, FCM 稀释比例
WB IP IF FCM
1:2000 1:50 1:100-1:1000 1:150
反应性 Human
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 27 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆或置于冰上超声裂解样品,静置30 min。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声处理以裂解细胞,并在冰上孵育 30 分钟。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声处理以裂解细胞,并在冰上孵育 30 分钟。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 60 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:2000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 
IF
实验步骤:
样品准备
1. 贴壁细胞:取洁净无菌盖玻片置于培养皿中,待细胞接近长成单层后取出盖玻片。
2. 悬浮细胞:将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。
3. 冰冻切片:将玻片置于室温下解冻,纯水或 PBS 摇洗 3次,每次 3 min。
4. 石蜡切片:先将玻片脱蜡至水,纯水或 PBS 摇洗 3次,每次 3 min。然后进行抗原修复。
 
固定
1. 使用固定液,如4%多聚甲醛(4% PFA)室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次,每次 3 min。
 
通透
1. 对样品添加去垢剂,如 0.1~0.3% Triton X-100,室温通透 10~20 min。
(仅针对胞内抗原,若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。)
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次,每次 3 min。
 
封闭
添加封闭液,在室温下封闭至少 1 h。(常用的封闭液包括:与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。)
注意事项:从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润,避免干燥,否则极易产生高背景。
 
免疫荧光染色(第一天)
1. 吸走封闭液,滴加稀释后的一抗。
2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。
 
免疫荧光染色(第二天)
1. 吸走一抗,PBST 摇洗 3 次,每次 5 min。
2. 滴加稀释后的荧光二抗,避光 4°C 孵育 1~2 h。
3. 吸走二抗,PBST 摇洗 3 次,每次 5 min。
4. 滴加稀释后的 DAPI,室温避光 孵育 5~10 min。
5. PBST 中摇洗 3 次,每次 5 分钟。
 
封片
1. 抗荧光淬灭封片剂封片。
2. 干燥玻片,将玻片置于室温下避光过夜。
3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。
 

Application Data

WB

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