p38β MAPK Antibody [F9P5]

目录号:F0820

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生物描述

特异性 p38β MAPK Antibody [F9P5] 可检测内源性 p38β MAPK 总蛋白水平。
背景 p38β MAPK是p38丝裂原活化蛋白激酶家族的四种亚型之一,其他四种亚型包括p38α、p38β、p38γ和p38δ,它们介导细胞对环境应激和炎症细胞因子的反应。p38β具有一个保守的激酶结构域,该结构域由位于ATP结合位点两侧的N端和C端结构域组成,并且在激活环的Thr180和Tyr182残基处存在TGY基序。p38β的完全激活需要上游激酶MKK3和MKK6对这些残基进行双重磷酸化,而这种磷酸化是在渗透压冲击、LPS或生长因子等刺激下发生的。一旦被激活,p38β整合这些信号,从而调节各种组织中的基因表达、细胞凋亡和细胞骨架重塑。 p38β 可磷酸化转录因子,包括 ATF-2 和 MEF2,从而驱动炎症介质和应激反应基因的表达。在中枢神经系统中,p38β 通过 MAPKAP 激酶影响神经元翻译,而 MAPKAP 激酶通过富含 AU 的元件调节 mRNA 的稳定性。此外,p38β 的激活会导致钠/钙交换器 NCX1 的磷酸化,从而影响离子稳态和神经元兴奋性。与 p38α 不同,p38β 具有组织特异性表达和独特的底物偏好性,支持刺激特异性的细胞反应。p38β 通过改变蛋白质合成和促进对淀粉样蛋白 β 或氧化应激的炎症反应,参与神经退行性疾病的发生。p38β 活性的增加与癌症进展相关,促进细胞迁移和存活信号传导增强,以及炎症状态下内皮屏障功能障碍和活性氧 (ROS) 的产生。 p38β 还通过调节 MAPKAPK2 和 MEF2 依赖的基因转录来协调肌生成和适应。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:50
反应性 Human, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 43 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: HUVEC, Lane 2: COS