PFKFB3 Antibody [A21K14]

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生物描述

特异性 PFKFB3 Antibody [A21K14] 可检测内源性 PFKFB3 总蛋白水平。
背景 PFKFB3(6-磷酸果糖-2-激酶/果糖-2,6-二磷酸酶3)是一种双功能酶,它通过调节细胞内果糖-2,6-二磷酸(F2,6BP)的水平,在糖酵解调控中发挥关键作用。F2,6BP是磷酸果糖激酶-1(PFK-1)的强效变构激活剂,而PFK-1是糖酵解的主要限速酶。PFKFB3以同源二聚体的形式存在,每个亚基包含一个N端激酶结构域和一个C端二磷酸酶结构域。N端激酶结构域能够利用果糖-6-磷酸(F6P)和ATP合成F2,6BP;C端二磷酸酶结构域则能够将F2,6BP降解为F6P和无机磷酸盐。PFKFB3的激酶活性远高于其磷酸酶活性,从而显著促进糖酵解通量。 PFKFB3 的表达在缺氧诱导因子 (HIF) 的强烈诱导下显著上调,尤其是在低氧条件下,以增强糖酵解并满足增加的能量需求。PFKFB3 作为一种代谢开关,整合糖酵解和合成代谢途径,协调能量产生和生物合成过程,这对于细胞在代谢应激期间的增殖和存活至关重要。F2,6BP 水平升高可变构激活 PFK-1,驱动 F6P 不可逆地转化为果糖-1,6-二磷酸,从而加速糖酵解和 ATP 的生成。PFKFB3 还调节磷酸戊糖途径,影响氧化还原平衡和核苷酸合成,这对细胞生长至关重要。其活性还受到翻译后修饰的进一步调控,例如 Ser461 位点的磷酸化可增强其激酶活性。 PFKFB3 的上调驱动癌症中的瓦博格效应,通过维持高糖酵解率促进肿瘤生长、血管生成和转移,并且通过破坏葡萄糖稳态导致糖尿病等代谢性疾病。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 60 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: HepG2, Lane 2: Hela, Lane 3: INS-1, Lane 4: COS-7