Phospho-ALK (Tyr1604) Antibody [G21H21] Datasheet

生物描述

特异性	Phospho-ALK (Tyr1604) Antibody [G21H21] 仅识别 Tyr1604 处磷酸化的内源性 ALK 蛋白水平。
背景	磷酸化ALK（Tyr1604）属于胰岛素受体酪氨酸激酶家族，作为ALKAL1和ALKAL2等配体的受体，这些配体驱动ALKAL1和ALKAL2的激活，从而参与神经发育和能量稳态。该蛋白由1620个氨基酸组成，其胞外配体结合区包含MAM和富含甘氨酸的结构域，一个跨膜螺旋，以及一个胞内激酶结构域，其中Tyr1604位于激活环中。配体结合后，ALK二聚化，导致多个酪氨酸残基发生自身磷酸化，包括Tyr1604，从而完全激活激酶，并促进PLCγ等效应分子的结合。Tyr1604的磷酸化对于PLCγ的募集至关重要，它触发PLCγ的激活，进而产生IP3和DAG，动员钙离子并激活PKC，从而促进细胞增殖和存活信号传导。该位点对应于致癌性NPM-ALK融合蛋白中的Tyr664，该位点的突变会消除间变性大细胞淋巴瘤中PLCγ的结合、致癌效力和促有丝分裂活性。ALK信号通过Tyr1604磷酸化向下游传递至MAPK/ERK、PI3K/AKT和NF-κB通路，促进MDK/PTN刺激细胞的神经元分化、抗凋亡反应和自分泌生长。在非小细胞肺癌中，EML4-ALK融合蛋白导致配体非依赖性的Tyr1604磷酸化，过度激活这些通路，从而驱动肿瘤发生、侵袭和抗凋亡。下丘脑神经元中Tyr1604位点的磷酸化ALK抑制脂肪分解和交感神经输出，增强对饮食诱导肥胖的抵抗力。 Tyr1604 磷酸化失调是神经母细胞瘤和炎性肌纤维母细胞瘤等侵袭性 ALK 驱动的恶性肿瘤的基础，它维持 PLCγ 介导的发病机制。

特异性

Phospho-ALK (Tyr1604) Antibody [G21H21] 仅识别 Tyr1604 处磷酸化的内源性 ALK 蛋白水平。

背景

磷酸化ALK（Tyr1604）属于胰岛素受体酪氨酸激酶家族，作为ALKAL1和ALKAL2等配体的受体，这些配体驱动ALKAL1和ALKAL2的激活，从而参与神经发育和能量稳态。该蛋白由1620个氨基酸组成，其胞外配体结合区包含MAM和富含甘氨酸的结构域，一个跨膜螺旋，以及一个胞内激酶结构域，其中Tyr1604位于激活环中。配体结合后，ALK二聚化，导致多个酪氨酸残基发生自身磷酸化，包括Tyr1604，从而完全激活激酶，并促进PLCγ等效应分子的结合。Tyr1604的磷酸化对于PLCγ的募集至关重要，它触发PLCγ的激活，进而产生IP3和DAG，动员钙离子并激活PKC，从而促进细胞增殖和存活信号传导。该位点对应于致癌性NPM-ALK融合蛋白中的Tyr664，该位点的突变会消除间变性大细胞淋巴瘤中PLCγ的结合、致癌效力和促有丝分裂活性。ALK信号通过Tyr1604磷酸化向下游传递至MAPK/ERK、PI3K/AKT和NF-κB通路，促进MDK/PTN刺激细胞的神经元分化、抗凋亡反应和自分泌生长。在非小细胞肺癌中，EML4-ALK融合蛋白导致配体非依赖性的Tyr1604磷酸化，过度激活这些通路，从而驱动肿瘤发生、侵袭和抗凋亡。下丘脑神经元中Tyr1604位点的磷酸化ALK抑制脂肪分解和交感神经输出，增强对饮食诱导肥胖的抵抗力。 Tyr1604 磷酸化失调是神经母细胞瘤和炎性肌纤维母细胞瘤等侵袭性 ALK 驱动的恶性肿瘤的基础，它维持 PLCγ 介导的发病机制。

使用信息

抗体应用

WB, IP

稀释比例

WB	IP
1:1000	1:30

反应性

Human

抗体类型

Rabbit Monoclonal Antibody

MW

176 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

[1] Sattu K, et al. FEBS J. 2013 Nov;280(21):5269-82.

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: KARPAS-299, Lane 2: KARPAS-299 (pervanadate, 1 mM, 30 min)