Phospho-Met (Tyr1349) Antibody [D24L22]

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生物描述

特异性 Phospho-Met (Tyr1349) Antibody [D24L22] 仅识别 Tyr1349 处磷酸化的内源性 Met 蛋白水平。
背景 磷酸化 Met (Tyr1349) 是指肝细胞生长因子受体 Met 的激活状态,Met 是一种二硫键连接的异二聚体受体酪氨酸激酶(~45 kDa 胞外 α 链和 ~145 kDa 跨膜 β 链),它与 HGF 结合,从而协调上皮细胞和其他细胞类型的侵袭性生长程序,如增殖、存活、迁移和形态发生。 Met蛋白的胞外区包含一个信号素(SEMA)结构域、PSI结构域和四个IPT重复序列,用于识别HGF并形成二聚体;其胞内区包含一个跨膜螺旋;胞内区包含一个近膜区(含有Tyr1003,用于CBL介导的泛素化/降解,以及抑制性Ser957/Ser975残基)、一个酪氨酸激酶结构域(含有激活环Tyr1234/Tyr1235,其磷酸化可增强催化活性)以及一个C端尾部,该尾部含有Tyr1349和Tyr1356残基,形成一个多底物结合位点。HGF结合后,Met蛋白二聚化,其激酶结构域对Tyr1234/Tyr1235进行反式磷酸化,从而稳定其活性构象,进而使Tyr1349(以及Tyr1356)发生磷酸化。磷酸化的Tyr1349为接头蛋白Gab1提供高亲和力结合位点,并募集包括GRB2、PI3K p85、SHP2、Src和STAT3在内的含SH2结构域的效应蛋白,从而构建一个信号枢纽,将Met与Ras-MAPK、PI3K-Akt、STAT和Rho家族GTP酶通路连接起来,驱动细胞周期进程、存活、迁移和上皮-间质转化。Tyr1349/Tyr1356的突变或缺失会损害Gab1的结合以及下游PI3K/MAPK的激活,尽管激酶活性得以保留。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 145 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: H-4-II-E, Lane 2: H-4-II-E (HGF, 50ng/mL, 5min)