Phospho-STAT3 (Ser727) Antibody [J17G14]

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生物描述

特异性 Phospho-STAT3 (Ser727) Antibody [J17G14] 仅识别 Ser727 处磷酸化的内源性 STAT3 蛋白水平。
背景 磷酸化STAT3 (Ser727) 是STAT3转录因子的丝氨酸磷酸化形式,它在细胞因子和生长因子信号传导的下游被激活。这种修饰发生在C端转录激活结构域内,具体位于Pro715附近的柔性环中,并在STAT3的初始Tyr705磷酸化、二聚化和核转位后,由MAPK和mTOR通路介导。Ser727磷酸化通过募集TC45磷酸酶加速Tyr705的去磷酸化,从而实现快速的激活-失活循环,这对于白细胞介素-6信号传导至关重要。这种磷酸化事件会破坏二聚体之间的相互作用,并削弱C端尾部的分子间和分子内相互作用,从而促进不依赖于CRM1的核输出,并阻止STAT3信号的持续激活。 Ser727磷酸化对STAT3的动态调控确保了靶基因表达(包括socs3和saa1等基因)的精确时间控制。S727A突变或N端标记等改变会破坏这种调控循环,导致STAT3在细胞核内积累并延迟其重新激活。在癌症中,磷酸化STAT3(Ser727)可以独立于Tyr705磷酸化驱动不同的基因表达程序,例如在透明细胞肾细胞癌中观察到的情况。而Ser727磷酸化的慢性过度激活则通过NF-κB和AP-1信号通路的异常相互作用,促进炎症和自身免疫性疾病的发生。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:200
反应性 Human, Mouse, Rat, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 86 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: U266, Lane 2: U266 (hIFN-α1, 50ng/ml, 15 min), Lane 3: Hela, Lane 4: Hela (hTNF-α, 20ng/ml, 30 min)