Phospho-Tuberin (Ser939) Antibody [B6P7]

目录号:F2352

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生物描述

特异性

Phospho-Tuberin (Ser939) Antibody [B6P7] 仅识别 Ser939 处磷酸化的内源性 Tuberin 总蛋白水平。

背景 磷酸化块茎蛋白 (Ser939) 是指块茎蛋白(TSC2 基因产物)的磷酸化形式,位于丝氨酸残基 939 位,该位点受生长因子信号调控。块茎蛋白是一种抑癌蛋白,含有针对 Rheb 的 GAP 活性功能域,并与错构瘤蛋白 (TSC1) 形成复合物,从而抑制 mTORC1 信号传导并控制细胞生长。块茎蛋白包含一个与错构瘤蛋白结合的 N 端区域、一个与细胞周期蛋白 B1 相互作用的中心区域、一个用于蛋白质间相互作用的亮氨酸拉链 (LZ) 和卷曲螺旋 (CC) 结构域,以及一个对 Rheb 抑制至关重要的 C 端 GTP 酶激活 (GAP) 结构域。块茎蛋白主要在各种组织中表达,尤其是在脑、肾和皮肤中,它能够抑制肿瘤形成。在生长因子刺激下,AKT和TACC3等激酶会磷酸化Ser939,从而促进14-3-3蛋白的结合。这种磷酸化不会削弱马铃薯蛋白固有的GAP活性,但会导致其从膜相关区室(其在膜相关区室抑制Rheb)转位至胞质溶胶,从而有效缓解mTOR抑制。因此,Ser939磷酸化在丝裂原刺激期间调节mTORC1信号传导中起关键作用,并且在细胞分裂期间将马铃薯蛋白定位至有丝分裂装置,从而将细胞生长信号与正确的胞质分裂和细胞周期进程联系起来。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000 - 1:10000
反应性 Human, Mouse
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 201 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:250 mA, 180 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 120s 以上)
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: SH-SY5Y, Lane 2: SH-SY5Y (Okadaic Acid, 200nM and Calyculin A, 1uM, 60 min), Lane 3: SH-SY5Y (Okadaic Acid, 200nM and Calyculin A, 1uM, 60 min; phosphatase-treated)