Phospho-YAP (Ser397) Antibody [B23M8]

目录号:F0753

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生物描述

特异性

Phospho-YAP (Ser397) Antibody [B23M8] 仅识别 Ser397 处磷酸化的内源性 YAP 总蛋白水平。

背景 pYAP-Ser397(Ser397位点磷酸化 YAP)是 Yes 相关蛋白 (YAP) 的磷酸化形式,YAP 是 Hippo 信号通路中的关键转录共激活因子,负责调节细胞增殖、干细胞更新和组织生长。激酶 LATS1/2 对 S397 位点进行磷酸化,产生磷酸化降解决定子基序,该基序有利于 β-TrCP E3 泛素连接酶的识别,导致 YAP 在蛋白酶体中降解,从而抑制其转录活性。这种翻译后修饰在限制 YAP 的核定位和阻止 TEAD 介导的基因转录激活方面起着关键作用,而 TEAD 介导的基因转录促进了细胞周期进程、存活和致癌转化。相反,由磷酸酶(例如PP1A)介导的S397位点去磷酸化,可以稳定YAP并促进其在细胞核中积累,从而驱动促生长基因(例如Myc、细胞周期蛋白E和Rheb)的转录,尤其是在增殖的祖细胞中。值得注意的是,S397磷酸化不仅受LATS激酶调控,还通过LATS非依赖性通路(例如整合素α3/FAK/CDC42轴)调控,该通路调节PP1A活性以促进YAP-S397去磷酸化。因此,pYAP-S397充当平衡YAP稳定性和定位的分子开关,其调控对于维持组织稳态、支持干细胞动力学以及防止过度增殖或肿瘤形成至关重要。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:100
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 65 kDa-78 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: HepG2, Lane 2: SW480, Lane 3: MDA-MB-435, Lane 4: MDA-MB-453