Rev-Erbα Antibody [N13G12]

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生物描述

特异性 Rev-Erbα Antibody [N13G12] 可检测内源性 Rev-Erbα 总蛋白水平。
背景 Rev-erbα (NR1D1) 是 Rev-erb 亚家族 (Rev-erbα/β) 中的一种孤儿核受体,它作为一种组成型转录抑制因子发挥作用,这与大多数依赖配体激活的核受体不同。Rev-erbα 缺乏募集共激活因子所必需的 AF2 螺旋,而是通过其配体结合域 (LBD) 将 N-CoR/HDAC3 共抑制复合物募集到 RORE 位点 (AGGTCA) 或 Rev-DR2 基序上,从而抑制基因表达,有效沉默对昼夜节律、代谢调控和炎症至关重要的基因。Rev-erbα 的 LBD 包含一个独特的弯曲螺旋 H11,该螺旋封闭了疏水性配体口袋,阻止了传统的配体结合(尽管血红素以类似的方式与 Rev-erbβ 结合)。 Rev-erbα 表现出类似开关的构象变化,使其能够竞争性抑制 ROR 激活剂,并通过 CoRNR1 基序促进血红素稳定的 N-CoR 结合,形成反平行 β 折叠。Rev-erbα 在肝脏、肌肉、大脑和脂肪组织等组织中振荡,并与 RORα 竞争 DNA 结合位点,从而抑制生物钟核心组分 BMAL1 的表达。它还通过抑制 IL-6 和 COX-2 等 NF-κB 靶点来调节脂质代谢(ApoA-I/C-III)、脂肪细胞分化和炎症反应。GSK3β 介导的 Ser55/59 位点磷酸化可稳定 Rev-erbα,确保其正常的昼夜节律同步性。Rev-erbα 的失调与代谢紊乱、癌症和心律失常密切相关。

使用信息

抗体应用 WB, IP, ChIP 稀释比例
WB IP CHIP
1:1000 1:100 1:100
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 78 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

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