SUFU Antibody [B21L1] Datasheet

生物描述

特异性	SUFU Antibody [B21L1] 可检测内源性 SUFU 总蛋白水平。
背景	SUFU（融合抑制因子）是Hedgehog (Hh)信号通路的核心负调控因子，对胚胎模式形成和组织稳态至关重要。它通过其结构化的N端结构域(NTD)将GLI转录因子隔离在细胞质中。NTD包含四个α螺旋，形成一个疏水性的SYGHL结合口袋，并与GLI蛋白保守的C端基序结合。固有无序的C端结构域(CTD，氨基酸残基279-360)保持柔性，能够参与调控相互作用。CTD两侧是中央螺旋区和SYGHL结合槽，这些区域在与GLI结合后会发生显著的构象变化，从而稳定抑制性的SUFU-GLI复合物。在缺乏Hh配体的情况下，SUFU通过双重NTD-CTD界面与全长GLI2/3 (FL-GLI)结合，阻止GLI核转位和激活功能，同时通过胞质滞留和磷酸化支架作用促进PKA/GSK3β/SCF Slimb介导的GLI3部分蛋白水解，生成其抑制形式(GLI3R)。Hh刺激后，纤毛上的活化Smoothened (Smo)募集SUFU-GLI复合物，通过SUFU CTD环的构象变化触发复合物的快速解离，从而解除对GLI的抑制，使GLI能够核转位并激活靶基因(Ptch1, Gli1)，同时抑制蛋白水解。GSK3β对SUFU的磷酸化则精细调节这种调控平衡。生殖系SUFU突变通过配体非依赖性GLI激活，导致类似戈林综合征，其特征是髓母细胞瘤和基底细胞痣综合征（BCNS）的高外显率。体细胞SUFU缺失通过解除抑制的GLI信号传导和增强肿瘤干性，驱动约10%的髓母细胞瘤和横纹肌肉瘤的发生。

特异性

SUFU Antibody [B21L1] 可检测内源性 SUFU 总蛋白水平。

背景

SUFU（融合抑制因子）是Hedgehog (Hh)信号通路的核心负调控因子，对胚胎模式形成和组织稳态至关重要。它通过其结构化的N端结构域(NTD)将GLI转录因子隔离在细胞质中。NTD包含四个α螺旋，形成一个疏水性的SYGHL结合口袋，并与GLI蛋白保守的C端基序结合。固有无序的C端结构域(CTD，氨基酸残基279-360)保持柔性，能够参与调控相互作用。CTD两侧是中央螺旋区和SYGHL结合槽，这些区域在与GLI结合后会发生显著的构象变化，从而稳定抑制性的SUFU-GLI复合物。在缺乏Hh配体的情况下，SUFU通过双重NTD-CTD界面与全长GLI2/3 (FL-GLI)结合，阻止GLI核转位和激活功能，同时通过胞质滞留和磷酸化支架作用促进PKA/GSK3β/SCF Slimb介导的GLI3部分蛋白水解，生成其抑制形式(GLI3R)。Hh刺激后，纤毛上的活化Smoothened (Smo)募集SUFU-GLI复合物，通过SUFU CTD环的构象变化触发复合物的快速解离，从而解除对GLI的抑制，使GLI能够核转位并激活靶基因(Ptch1, Gli1)，同时抑制蛋白水解。GSK3β对SUFU的磷酸化则精细调节这种调控平衡。生殖系SUFU突变通过配体非依赖性GLI激活，导致类似戈林综合征，其特征是髓母细胞瘤和基底细胞痣综合征（BCNS）的高外显率。体细胞SUFU缺失通过解除抑制的GLI信号传导和增强肿瘤干性，驱动约10%的髓母细胞瘤和横纹肌肉瘤的发生。

使用信息

抗体应用

WB

稀释比例

WB

1:1000

反应性

Human, Mouse, Rat, Monkey

抗体类型

Rabbit Monoclonal Antibody

MW

54 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: Hela, Lane 2: COS, Lane 3: NIH/3T3, Lane 4: A10