Toll-like Receptor 3 Antibody [H22B16] Datasheet

生物描述

特异性	Toll-like Receptor 3 Antibody [H22B16] 可检测内源性 Toll-like Receptor 3 总蛋白水平。
背景	Toll样受体3 (TLR3) 是一种关键的内体模式识别受体 (PRR)，主要表达于树突状细胞、成纤维细胞和上皮细胞中，其特异性识别双链RNA (dsRNA) 和合成类似物（如poly(I:C)），从而启动抗病毒免疫反应。TLR3由23个胞外富含亮氨酸重复序列 (LRR) 组成，形成一个糖基化的马蹄形胞外结构域，其侧向配体结合位点缺乏糖基屏蔽，有利于二聚体dsRNA的结合；此外，TLR3还包含一个跨膜螺旋和一个胞质Toll/IL-1受体 (TIR) 结构域，该结构域含有保守的BB环基序，对TRIF衔接蛋白的募集至关重要。配体结合后，TLR3二聚化，通过BB环对接实现TIR-TRIF相互作用，并组装成TRAF6/RIP1/14-3-3ζ信号复合物。该复合物分为两条主要通路：一条通路通过TAK1/IKKβ介导的IκBα降解激活NF-κB，进而驱动促炎细胞因子（IL-6、TNF-α、IL-12）的产生；另一条通路通过TBK1/IKKε磷酸化IRF3/7，诱导I型干扰素（IFN-α/β）的产生。TRIF的N端结构域也与FADD/caspase-8相互作用，整合凋亡调控。溶酶体酸化和UNC93B1介导的转运严格控制TLR3的定位和激活，快速内吞作用可抑制过度激活。 TLR3 失调会导致 SLE 等自身免疫性疾病（通过识别凋亡 RNA）、银屑病和 COPD 等疾病中的慢性炎症，以及与环境相关的肿瘤进展，其中 poly(I:C) 可以诱导免疫原性细胞死亡或化疗耐药性。

特异性

Toll-like Receptor 3 Antibody [H22B16] 可检测内源性 Toll-like Receptor 3 总蛋白水平。

背景

Toll样受体3 (TLR3) 是一种关键的内体模式识别受体 (PRR)，主要表达于树突状细胞、成纤维细胞和上皮细胞中，其特异性识别双链RNA (dsRNA) 和合成类似物（如poly(I:C)），从而启动抗病毒免疫反应。TLR3由23个胞外富含亮氨酸重复序列 (LRR) 组成，形成一个糖基化的马蹄形胞外结构域，其侧向配体结合位点缺乏糖基屏蔽，有利于二聚体dsRNA的结合；此外，TLR3还包含一个跨膜螺旋和一个胞质Toll/IL-1受体 (TIR) 结构域，该结构域含有保守的BB环基序，对TRIF衔接蛋白的募集至关重要。配体结合后，TLR3二聚化，通过BB环对接实现TIR-TRIF相互作用，并组装成TRAF6/RIP1/14-3-3ζ信号复合物。该复合物分为两条主要通路：一条通路通过TAK1/IKKβ介导的IκBα降解激活NF-κB，进而驱动促炎细胞因子（IL-6、TNF-α、IL-12）的产生；另一条通路通过TBK1/IKKε磷酸化IRF3/7，诱导I型干扰素（IFN-α/β）的产生。TRIF的N端结构域也与FADD/caspase-8相互作用，整合凋亡调控。溶酶体酸化和UNC93B1介导的转运严格控制TLR3的定位和激活，快速内吞作用可抑制过度激活。 TLR3 失调会导致 SLE 等自身免疫性疾病（通过识别凋亡 RNA）、银屑病和 COPD 等疾病中的慢性炎症，以及与环境相关的肿瘤进展，其中 poly(I:C) 可以诱导免疫原性细胞死亡或化疗耐药性。

使用信息

抗体应用

WB

稀释比例

WB

1:1000

反应性

Human

抗体类型

Rabbit Monoclonal Antibody

MW

115-130 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: 293T, Lane 2: 293T (human TLR3 transfected)