BATF Antibody [C3L16]

目录号: F4822

抗体应用：反应性：Mouse, Human

Lane 1: A20, Lane 2: KARPAS-299, Lane 3: HDLM-2

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

WB
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：20%。
湿转参考条件：200 mA, 60 min，建议使用 0.22 μm PVDF膜。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:30 IF1:100 FCM1:500

抗体应用
WB, IP, IF, FCM

反应性
Mouse, Human

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
14 kDa

阳性对照	KARPAS-299 cells; A20 cells
阴性对照	HeLa cells

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：20 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：20 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 60 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

IF
实验步骤：样品准备 1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。 2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。 3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。 4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。固定 1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。 2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。通透 1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。） 2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。封闭添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。免疫荧光染色（第一天） 1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。 2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。免疫荧光染色（第二天） 1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。 2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。 3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。 4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光孵育 5~10 min。 5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。封片 1. 抗荧光淬灭封片剂封片。 2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。 3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。

实验步骤：

样品准备

1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。

2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。

3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。

4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。

固定

1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。

2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。

通透

1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。

（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。）

2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。

封闭

添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）

注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。

免疫荧光染色（第一天）

1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。

2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。

免疫荧光染色（第二天）

1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。

2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。

3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。

4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光孵育 5~10 min。

5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。

封片

1. 抗荧光淬灭封片剂封片。

2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。

3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
BATF Antibody [C3L16] 可检测内源性 BATF 总蛋白水平。

蛋白定位
细胞质，细胞核

Uniprot ID
Q16520

克隆号
C3L16

别名
Basic leucine zipper transcriptional factor ATF-like; B-cell-activating transcription factor; SF-HT-activated gene 2 protein; B-ATF; SFA-2; BATF

背景
BATF（碱性亮氨酸拉链ATF样转录因子）是AP-1/ATF家族bZIP转录因子成员，主要参与免疫细胞基因调控。该蛋白由125个氨基酸组成，包含一个识别AP-1共有基序（TGASTCA）的碱性DNA结合域（氨基酸残基18-35）和一个亮氨酸拉链区（氨基酸残基68-89），后者介导与Jun蛋白形成抑制性异二聚体，从而调节激活因子的结合。BATF的表达受T细胞受体（TCR）激活或IL-6/STAT3信号通路诱导，并在成熟的滤泡辅助性T细胞（Tfh）、Th17细胞和效应CD8 T细胞中达到峰值。作为一种先锋因子，BATF 可打开数千个染色质位点，并与 IRF4 和 JunB 协同激活关键效应基因，例如 Tbx21、Eomes、Prdm1 和 Gzmb。这驱动 CD8 T 细胞的细胞毒性、细胞因子（IFNγ、IL-2）的产生，并通过 Sirt1 介导代谢重编程。BATF 对 Il17a、Rorc 和 Maf 的表达至关重要，敲除 BATF 的小鼠模型由于缺乏 IL-17 反应而表现出对实验性自身免疫性脑脊髓炎 (EAE) 等自身免疫性疾病的抵抗力。在 Tfh 细胞中，BATF 诱导 Bcl6 和 Cxcr5 的表达，促进生发中心的形成和高亲和力抗体的产生。BATF 在激活后通过与 AID 和 Prdm1 启动子结合来调节类别转换重组，从而控制感染期间 IgG/IgA 的产生。在CD8 T细胞从效应细胞向记忆细胞转变的过程中，BATF靶基因呈现时间上的聚集性表达，富集于TCR信号通路、细胞因子受体、细胞归巢和细胞凋亡调控等领域。BATF缺陷会损害效应细胞分化并削弱病毒控制，这在LCMV感染模型中已有体现。在癌症中，BATF重编程调节性T细胞（Treg）的表观基因组，从而增强抗肿瘤免疫。BATF失调通过过度活跃的Th17/Tfh反应导致自身免疫性疾病（例如狼疮），而BATF缺陷则可预防实验性自身免疫性脑脊髓炎（EAE）和结肠炎。

背景

BATF（碱性亮氨酸拉链ATF样转录因子）是AP-1/ATF家族bZIP转录因子成员，主要参与免疫细胞基因调控。该蛋白由125个氨基酸组成，包含一个识别AP-1共有基序（TGASTCA）的碱性DNA结合域（氨基酸残基18-35）和一个亮氨酸拉链区（氨基酸残基68-89），后者介导与Jun蛋白形成抑制性异二聚体，从而调节激活因子的结合。BATF的表达受T细胞受体（TCR）激活或IL-6/STAT3信号通路诱导，并在成熟的滤泡辅助性T细胞（Tfh）、Th17细胞和效应CD8 T细胞中达到峰值。作为一种先锋因子，BATF 可打开数千个染色质位点，并与 IRF4 和 JunB 协同激活关键效应基因，例如 Tbx21、Eomes、Prdm1 和 Gzmb。这驱动 CD8 T 细胞的细胞毒性、细胞因子（IFNγ、IL-2）的产生，并通过 Sirt1 介导代谢重编程。BATF 对 Il17a、Rorc 和 Maf 的表达至关重要，敲除 BATF 的小鼠模型由于缺乏 IL-17 反应而表现出对实验性自身免疫性脑脊髓炎 (EAE) 等自身免疫性疾病的抵抗力。在 Tfh 细胞中，BATF 诱导 Bcl6 和 Cxcr5 的表达，促进生发中心的形成和高亲和力抗体的产生。BATF 在激活后通过与 AID 和 Prdm1 启动子结合来调节类别转换重组，从而控制感染期间 IgG/IgA 的产生。在CD8 T细胞从效应细胞向记忆细胞转变的过程中，BATF靶基因呈现时间上的聚集性表达，富集于TCR信号通路、细胞因子受体、细胞归巢和细胞凋亡调控等领域。BATF缺陷会损害效应细胞分化并削弱病毒控制，这在LCMV感染模型中已有体现。在癌症中，BATF重编程调节性T细胞（Treg）的表观基因组，从而增强抗肿瘤免疫。BATF失调通过过度活跃的Th17/Tfh反应导致自身免疫性疾病（例如狼疮），而BATF缺陷则可预防实验性自身免疫性脑脊髓炎（EAE）和结肠炎。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24584090/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21572431/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%