Cytochrome P450 Reductase Antibody (Rabbit mAb) [A13P3]
目录号: F8820
抗体应用：
反应性：
-
Lane 1: Hela, Lane 2: HepG2, Lane 3: A431, Lane 4: Mouse brain
使用信息
| 稀释比例 |
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| 抗体应用 |
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| WB, IHC, IF, FCM |
| 反应性 |
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| Mouse, Rat, Human |
| 抗体类型 |
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| Rabbit Monoclonal Antibody |
| 储存液配方 |
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| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3 |
| 储存条件(自收到货起) |
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| -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
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预测分子量
实际分子量
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76 kDa
80 kDa, 75 kDa
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| *为什么预测分子量和实际分子量会有不同？ 以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同：翻译后修饰（磷酸化/糖基化）；剪接变体和异构体；相对电荷；多聚体。 |
| 阳性对照 | Human infiltrating duct carcinoma of breast tissue; Mouse kidney tissue; Rat kidney tissue; Mouse brain tissue; Mouse heart tissue; Mouse spleen tissue; Rat brain tissue; Rat heart tissue; Rat spleen tissue; HeLa cells; HepG2 cells; MCF7 cells; A431 cells; HCT116 cells |
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| 阴性对照 |
实验方法
| WB |
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实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 120 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IF |
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实验步骤：
样品准备
1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。
2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。
3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。
4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。
固定
1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
通透
1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。
（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。）
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
封闭
添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）
注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。
免疫荧光染色（第一天）
1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。
2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。
免疫荧光染色（第二天）
1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。
3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光 孵育 5~10 min。
5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。
封片
1. 抗荧光淬灭封片剂封片。
2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。
3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。
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| IHC |
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实验步骤：
脱蜡/补液
1. 脱蜡/水合切片：
2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。
3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。
4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。
5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾； 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
染色
1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。
2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
13. 如果需要，用苏木精复染切片。
14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒； 在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒； 在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。
16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
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生物描述
| 特异性 |
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| Cytochrome P450 Reductase Antibody (Rabbit mAb) [A13P3] 可检测内源性 Cytochrome P450 Reductase 总蛋白水平。 |
| 蛋白定位 |
|---|
| 内质网，内膜系统 |
| Uniprot ID |
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| P16435 |
| 克隆号 |
|---|
| A13P3 |
| 别名 |
|---|
| CYPOR, POR, NADPH--cytochrome P450 reductase, CPR, P450R |
| 背景 |
|---|
| 细胞色素P450还原酶（CPR，又称NADPH-细胞色素P450氧化还原酶，POR）是一种微粒体双黄素氧化还原酶，属于FAD/FMN类电子传递酶家族，是几乎所有内质网细胞色素P450同工酶的必需电子供体，从而调控多种外源性和内源性氧化反应。该酶通过N端膜片段锚定于内质网胞质侧，其胞质催化区由两个独立的FAD结合域和FMN结合域组成，这两个结合域通过一个柔性铰链连接。FAD结合域从NADPH接收氢负离子当量，而FMN结合域与P450和细胞色素b5等氧化还原伙伴对接。电子传递遵循一条既定的途径：NADPH还原FAD辅因子，FAD还原FMN，FMN随后将单个电子逐个传递给微粒体P450的血红素铁或其他受体；机制分析支持一种催化循环，其中CPR在氧化态、双电子还原态和单电子还原态的FMN半醌之间循环，从而能够将氧活化所需的单个电子依次传递给P450。CPR因此支持P450催化的单加氧反应，这些反应参与I期药物代谢、环境异生物质解毒以及类固醇、胆汁酸、胆固醇衍生介质和脂肪酸代谢物的生物合成，同时CPR还将电子传递给其他氧化还原酶，包括血红素加氧酶、角鲨烯单加氧酶和一些细胞色素b5依赖性途径，从而将其影响扩展到脂质稳态和血红素周转。 CPR与P450的相互作用依赖于FMN结构域附近的互补静电表面以及铰链介导的结构域运动，这些运动使FMN处于快速电子传递的最佳距离。此外，CPR结合还可以通过调节血红素结构域近端的水通道和质子通道来调控P450的催化循环。CPR活性有助于可扩散的还原性氧物种的生成，因为电子通过氧化还原循环传递给醌类等外源性受体或分子氧可以产生超氧化物和其他活性氧物种，这使得CPR依赖性代谢与高外源性物质负荷或P450偶联受损条件下的氧化应激和细胞毒性联系起来。在肝脏生理学中，POR的表达水平和活性是决定微粒体P450总容量的主要因素，POR的个体间差异或多态性会影响许多药物的清除率、疗效和毒性特征，这些药物的生物转化依赖于CYP3A、CYP2C和其他POR依赖性同工酶，从而成为药代动力学变异性的关键决定因素。CPR还调节肾上腺和性腺组织中类固醇激素和胆汁酸生物合成的P450，POR缺乏或突变会通过损害21-羟化酶、17α-羟化酶/17,20-裂解酶和其他类固醇生成细胞色素P450的活性，导致类固醇生成紊乱和骨骼畸形。 |
| 参考文献 |
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