Myocilin Antibody [D9K2]

目录号: F5102

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat, Pig

Lane 1: Mouse heart, Lane 2: Rat heart

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
400-668-6834 info@selleck.cn

使用信息

稀释比例
WB1:1000-1:8000 IHC1:50-1:500

抗体应用
WB, IHC, ELISA

反应性
Human, Mouse, Rat, Pig

抗体类型
Mouse Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量实际分子量
57 kDa 50-57 kDa
^*为什么预测分子量和实际分子量会有不同？以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同：翻译后修饰（磷酸化/糖基化）；剪接变体和异构体；相对电荷；多聚体。

阳性对照	Pig heart tissue; Human heart tissue
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

IHC
实验步骤：脱蜡/补液 1. 脱蜡/水合切片： 2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。 3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。 4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。 5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。 6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾；在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。在工作台上冷却玻片 30 分钟。染色 1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。 2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。 3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。 4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。 5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。 6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。 7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。 8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。在加湿室中室温孵育 30 分钟。 9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。 10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。 11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。 12. 将载玻片浸入 dH2O 中。 13. 如果需要，用苏木精复染切片。 14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。 15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒；在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒；在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。 16. 用盖玻片和封固剂封固切片。

IHC

实验步骤：

脱蜡/补液

1. 脱蜡/水合切片：

2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。

3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。

4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。

5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。

6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾；在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。在工作台上冷却玻片 30 分钟。

染色

1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。

2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。

3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。

4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。

5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。

6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。

7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。

8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。在加湿室中室温孵育 30 分钟。

9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。

10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。

11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。

12. 将载玻片浸入 dH2O 中。

13. 如果需要，用苏木精复染切片。

14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。

15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒；在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒；在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。

16. 用盖玻片和封固剂封固切片。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Myocilin Antibody [D9K2] 可检测内源性 Myocilin 总蛋白水平。

蛋白定位
细胞突起，纤毛，胞质囊泡，内质网，细胞外基质，高尔基体，内膜系统，线粒体

Uniprot ID
Q99972

克隆号
D9K2

别名
Myocilin; Myocilin 55 kDa subunit; Trabecular meshwork-induced glucocorticoid response protein; MYOC; GLC1A; TIGR

背景
肌纤蛋白（MYOC，又称TIGR）是一种55 kDa的分泌型糖蛋白，主要表达于眼部的房角小梁网™，也存在于骨骼肌、心脏和大脑中。其结构包括一个N端亮氨酸拉链（LZ）结构域（残基117-169，形成α螺旋以进行寡聚化）、用于蛋白质-蛋白质相互作用的卷曲螺旋区、一个中央连接区以及一个C端嗅觉介素（OLF）结构域，该结构域呈五叶β螺旋桨状，对细胞外结合至关重要。 MYOC 在 57-59 位氨基酸残基处发生 N-糖基化修饰，并经历蛋白水解（特别是钙蛋白酶 II 在 Glu214-Leu215 或 Arg226-Ile227 位点的切割），产生胞内 N 端片段和分泌型含 OLF 结构域的形式，两者均参与其功能。肌纤蛋白 (Myocilin) 通过调节小梁网 (TM) 重塑来调控房水流出，从而在眼内压 (IOP) 的调节中发挥核心作用。这一过程是通过与细胞外基质 (ECM) 成分（如胶原蛋白、层粘连蛋白、纤连蛋白、TIMP3、flotillin-1 和 hevin）相互作用，以及通过影响 Wnt 信号通路（经由 Frizzled 受体）来调控细胞黏附、迁移、增殖和分化而实现的。肌纤蛋白参与细胞骨架组织、应力纤维形成和维持组织完整性，其可溶性形式会影响全身 ECM 的动态变化。 MYOC 最显著的作用在于原发性开角型青光眼 (POAG)。超过 70% 的致病突变集中在第 3 外显子/OLF 区域，这些突变会破坏结构域环、疏水带或钙结合位点的稳定性。这些突变可导致内质网 (ER) 滞留、蛋白质聚集、自噬紊乱、氧化应激和分泌功能障碍，所有这些都会损害小梁网 (TM) 功能并升高眼压 (IOP)，最终导致视神经损伤。致病变异，例如 C25R，会影响信号肽的加工，而其他变异（例如 Gly364Val、Tyr437His）则会破坏蛋白质-蛋白质相互作用（尤其是与 flotillin-1 的相互作用）。

背景

肌纤蛋白（MYOC，又称TIGR）是一种55 kDa的分泌型糖蛋白，主要表达于眼部的房角小梁网™，也存在于骨骼肌、心脏和大脑中。其结构包括一个N端亮氨酸拉链（LZ）结构域（残基117-169，形成α螺旋以进行寡聚化）、用于蛋白质-蛋白质相互作用的卷曲螺旋区、一个中央连接区以及一个C端嗅觉介素（OLF）结构域，该结构域呈五叶β螺旋桨状，对细胞外结合至关重要。 MYOC 在 57-59 位氨基酸残基处发生 N-糖基化修饰，并经历蛋白水解（特别是钙蛋白酶 II 在 Glu214-Leu215 或 Arg226-Ile227 位点的切割），产生胞内 N 端片段和分泌型含 OLF 结构域的形式，两者均参与其功能。肌纤蛋白 (Myocilin) 通过调节小梁网 (TM) 重塑来调控房水流出，从而在眼内压 (IOP) 的调节中发挥核心作用。这一过程是通过与细胞外基质 (ECM) 成分（如胶原蛋白、层粘连蛋白、纤连蛋白、TIMP3、flotillin-1 和 hevin）相互作用，以及通过影响 Wnt 信号通路（经由 Frizzled 受体）来调控细胞黏附、迁移、增殖和分化而实现的。肌纤蛋白参与细胞骨架组织、应力纤维形成和维持组织完整性，其可溶性形式会影响全身 ECM 的动态变化。 MYOC 最显著的作用在于原发性开角型青光眼 (POAG)。超过 70% 的致病突变集中在第 3 外显子/OLF 区域，这些突变会破坏结构域环、疏水带或钙结合位点的稳定性。这些突变可导致内质网 (ER) 滞留、蛋白质聚集、自噬紊乱、氧化应激和分泌功能障碍，所有这些都会损害小梁网 (TM) 功能并升高眼压 (IOP)，最终导致视神经损伤。致病变异，例如 C25R，会影响信号肽的加工，而其他变异（例如 Gly364Val、Tyr437His）则会破坏蛋白质-蛋白质相互作用（尤其是与 flotillin-1 的相互作用）。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36267417/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30483726/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%