Calnexin (ER Membrane Marker) Antibody [H16B4]

目录号: F2880

    抗体应用: 反应性:
    规格 价格 库存 购买数量
    20uL 790 现货
    50uL 1240 现货
    100uL 1990 现货
    100uL*2 3790 现货

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    使用信息

    稀释比例
    1:1000 - 1:5000
    1:4000
    1:360
    抗体应用
    WB, IHC, FCM
    反应性
    Human
    抗体类型
    Rabbit Monoclonal Antibody
    储存液配方
    PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
    储存条件(自收到货起)
    -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
    预测分子量
    实际分子量
    68 kDa
    90 kDa, 80 kDa
    *为什么预测分子量和实际分子量会有不同?
    以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同:翻译后修饰(磷酸化/糖基化);剪接变体和异构体;相对电荷;多聚体。
    阳性对照 Human pancreas; Human kidney tissue; Rat cardiac muscle; HEK-293T cell; HeLa cell; HepG2 cell; HAP1 cell; THP1 cell; A431 cell
    阴性对照 Raw264.7 cell

    实验方法

    WB
    实验步骤:
     
    样品制备
    1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
    2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
    3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
    4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
    5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
    6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
     
    电泳分离
    1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
    2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
     
    转膜
    1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
    2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
    3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
    4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
    湿转法参考条件:200 mA, 120 min
    (注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
     
    封闭
    1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
    2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
    3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    抗体孵育
    1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
    2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
    3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
    4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    显色
    1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
    2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
     
    IHC
    实验步骤:
     
    脱蜡/补液
    1. 脱蜡/水合切片:
    2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次,每次 5 分钟。
    3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次,每次 10 分钟。
    4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次,每次 10 分钟。
    5. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    6.抗原修复:对于柠檬酸盐:将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中,在微波炉中加热,直至开始沸腾; 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
     
    染色
    1. 用 dH2O 清洗切片 3 次,每次 5 分钟。
    2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
    3. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
    5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
    6. 除去封闭液,并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
    7. 去除抗体溶液,用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
    9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
    11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
    12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
    13. 如果需要,用苏木精复染切片。
    14. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    15. 切片脱水:95%乙醇孵育切片两次,每次 10 秒; 在 100% 乙醇中重复,孵育切片两次,每次 10 秒; 在二甲苯中重复,孵育切片两次,每次 10 秒。
    16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
     

    Datasheet & SDS

    生物描述

    特异性
    Calnexin (ER Membrane Marker) Antibody [H16B4] 可检测内源性 Calnexin (ER Membrane Marker) 总蛋白水平。
    蛋白定位
    内质网,内膜系统,线粒体
    Uniprot ID
    P27824
    克隆号
    H16B4
    别名
    Calnexin; IP90; Major histocompatibility complex class I antigen-binding protein p88; p90; CANX
    背景
    钙网蛋白(内质网膜标志物)是内质网(ER)的一种I型整合膜蛋白,属于凝集素伴侣蛋白家族。它通过其凝集素样腔内结构域促进蛋白质折叠和新生糖蛋白的质量控制。该腔内结构域特异性结合未折叠蛋白上的N-连接糖链。钙网蛋白具有一个跨膜α螺旋,将其锚定于内质网膜;一个高度保守的内质网腔内结构域,负责糖链识别;以及一个胞质C端结构域,该结构域可发生磷酸化和棕榈酰化等翻译后修饰,从而调节其细胞内定位以及与胞质蛋白的相互作用。钙网蛋白与ERp57形成复合物,促进底物蛋白中二硫键的正确形成,防止错误折叠和聚集。这是钙网蛋白/钙网蛋白循环的关键环节,对维持内质网蛋白稳态至关重要。钙网蛋白通过与内质网自噬受体FAM134B相互作用,将错误折叠的糖蛋白靶向溶酶体降解,从而调控内质网自噬,并在内质网应激条件下维持细胞稳态。钙网蛋白还参与未折叠蛋白反应(UPR)和内质网相关降解(ERAD)通路,防止与囊性纤维化和神经退行性疾病等相关的错误折叠蛋白的积累。
    参考文献
    • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39273068/
    • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36766745/

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