CD54/ICAM-1 Antibody (Rabbit mAb) [M4J17]
目录号: F5514
抗体应用：
反应性：
-
Lane 1: HeLa, Lane 2: HeLa (KO ICAM1), Lane 3: Ramos, Lane 4: Raji
使用信息
| 稀释比例 |
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| 抗体应用 |
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| WB, IP, IHC, IF, FCM |
| 反应性 |
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| Rat, Human |
| 抗体类型 |
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| Rabbit Monoclonal Antibody |
| 储存液配方 |
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| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3 |
| 储存条件(自收到货起) |
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| -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
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预测分子量
实际分子量
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58 kDa
90 kDa
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| *为什么预测分子量和实际分子量会有不同？ 以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同：翻译后修饰（磷酸化/糖基化）；剪接变体和异构体；相对电荷；多聚体。 |
| 阳性对照 | Human kidney tissue; Human breast cancer tissue; Raji cells; HeLa cells; C6 cells; Rat splenocytes cells; Ramos cells |
|---|---|
| 阴性对照 |
实验方法
| WB |
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实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 在 20 μL 样品中加入蛋白上样缓冲液，可直接冰上备用；或通过温度梯度（如37 ℃煮样、50 ℃煮样、70 ℃煮样、90 ℃煮样、100 ℃煮样）来确定最佳变性条件，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 120 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IF |
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实验步骤：
样品准备
1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。
2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。
3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。
4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。
固定
1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
封闭
添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）
注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。
免疫荧光染色（第一天）
1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。
2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。
免疫荧光染色（第二天）
1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。
3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光 孵育 5~10 min。
5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。
封片
1. 抗荧光淬灭封片剂封片。
2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。
3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。
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| IHC |
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实验步骤：
脱蜡/补液
1. 脱蜡/水合切片：
2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。
3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。
4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。
5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾； 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
染色
1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。
2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
13. 如果需要，用苏木精复染切片。
14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒； 在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒； 在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。
16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
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生物描述
| 特异性 |
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| CD54/ICAM-1 Antibody (Rabbit mAb) [M4J17] 可检测内源性 CD54/ICAM-1 总蛋白水平。 |
| 蛋白定位 |
|---|
| 细胞膜，内膜系统 |
| Uniprot ID |
|---|
| P05362 |
| 克隆号 |
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| M4J17 |
| 别名 |
|---|
| CD54, Intercellular adhesion molecule 1, ICAM-1, Major group rhinovirus receptor, ICAM1 |
| 背景 |
|---|
| ICAM-1属于免疫球蛋白超家族的细胞黏附分子，是白细胞上两种不同的β2整合素受体LFA-1和Mac-1的主要配体。ICAM-1通过其胞外免疫球蛋白样结构域与这两种受体结合，介导白细胞与内皮细胞或抗原呈递细胞表面之间的牢固黏附。在细胞毒性CD8阳性T细胞上，ICAM-1与LFA-1的结合并非简单地将细胞黏附在一起，而是作为一种经过校准的、力依赖性的信号系统发挥作用：超分辨率成像显示，超过一千个离散的LFA-1纳米簇在免疫突触处聚集，并且这些纳米簇中呈现高亲和力构象的比例与同时发生的T细胞受体激活强度直接相关，从而将梯度抗原刺激转化为相应的梯度黏附反应。利用基于DNA的张力计系绳进行的重组实验表明，当力超过特定阈值时，抗原依赖性T细胞活化增强，T细胞受体对密切相关的抗原变体的区分能力也得到提升。这证实了ICAM1-LFA-1的结合能够提供真正的机械信号输入，而不仅仅是作为被动系绳。阻断LFA-1的构象活化会损害靶细胞的黏附和杀伤能力，但这种黏附检查点所需的T细胞受体刺激阈值低于后续的溶细胞颗粒胞吐步骤。这意味着ICAM1-LFA-1的结合是杀伤决策的许可机制，而非直接触发杀伤过程。由此可见，LFA-1的梯度活化是整个细胞毒性反应中的上游调控机制。除了这种面向淋巴细胞的作用外，ICAM1 在白细胞跨内皮迁移过程中还会发出反向信号：粘附的白细胞与 ICAM1 的胞质结构域结合，激活内皮细胞内的小 GTP 酶 RhoG，这种激活是通过 ICAM1 与 RhoG 特异性鸟嘌呤核苷酸交换因子 SGEF 通过 SGEF 的 SH3 结构域直接结合而实现的，这种相互作用和下游 RhoG 激活都需要 ICAM1 的胞内结构域。 ICAM1-SGEF相互作用下游的RhoG激活驱动动态膜突起（称为顶端杯）的形成，这些突起部分包围黏附的白细胞。沉默RhoG或SGEF均可显著减少顶端杯的形成和跨内皮迁移，但不影响白细胞的初始黏附步骤。这表明ICAM1具有两种机制上可分离的功能：黏附配体结合和RhoG-GEF偶联的细胞骨架信号传导，具体取决于所研究的细胞间接触的哪一侧。ICAM1在免疫突触机制和内皮顶端杯形成中的这种双重作用，使其成为一个明确的靶点，与癌症免疫治疗（其中LFA-1纳米簇的校准决定细胞毒性疗效）和炎症性血管疾病（其中SGEF依赖的白细胞外渗导致包括动脉粥样硬化在内的多种疾病）均相关。 |
| 参考文献 |
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