CISH Antibody [J15C14]

目录号: F1277

抗体应用：反应性：Human, Mouse

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

WB
湿转参考条件：200 mA, 60 min。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:100 FCM1:50 - 1:200

抗体应用
WB, IP, FCM

反应性
Human, Mouse

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
32 kDa, 37 kDa

阳性对照	NK-92 cell (hIL-2, 10 ng/ml, overnight); BaF3 cell (mIL-3,10 ng/ml, 6 h)
阴性对照	NK-92 cell; BaF3 cell; 293T cell

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 60 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
CISH Antibody [J15C14] 可检测内源性 CISH 总蛋白水平。

Uniprot ID
Q9NSE2

克隆号
J15C14

别名
Cytokine-inducible SH2-containing protein; CIS; CIS-1; Protein G18; Suppressor of cytokine signaling (SOCS); CISH; G18

背景
细胞因子诱导的含SH2结构域蛋白（CISH）是细胞因子信号抑制因子（SOCS）家族的创始成员，是细胞因子信号传导和免疫稳态的关键细胞内调节因子。CISH包含一个N端可变区、一个中央Src同源性2（SH2）结构域（可结合活化细胞因子受体上的磷酸酪氨酸残基）以及一个C端SOCS盒（介导elongin B/C复合物的募集，形成E3泛素连接酶复合物，进而引导信号相关蛋白进行蛋白酶体降解）。SH2结构域特异性地与磷酸化的JAK激酶和细胞因子受体链（例如IL-2、IL-3、IL-5和IL-7受体）相互作用，从而建立一种抑制JAK-STAT信号通路过度激活的反馈机制。 CISH在免疫细胞信号传导中发挥负向检查点的作用，尤其通过调节T调节细胞（Tregs）、自然杀伤（NK）细胞和CD8+ T细胞的激活阈值来实现。通过这种抑制作用，CISH能够精细调节效应细胞的反应，维持免疫耐受，并防止慢性抗原刺激期间的免疫过度激活。在造血调控方面，CISH能够抑制促红细胞生成素（EPO）驱动的STAT5激活，从而限制红系细胞的过度增殖。CISH表达失调与抗肿瘤免疫受损相关，例如脾边缘区淋巴瘤；而CISH的基因多态性则通过改变细胞因子反应性，使个体易患结核病和疟疾等传染病。

背景

细胞因子诱导的含SH2结构域蛋白（CISH）是细胞因子信号抑制因子（SOCS）家族的创始成员，是细胞因子信号传导和免疫稳态的关键细胞内调节因子。CISH包含一个N端可变区、一个中央Src同源性2（SH2）结构域（可结合活化细胞因子受体上的磷酸酪氨酸残基）以及一个C端SOCS盒（介导elongin B/C复合物的募集，形成E3泛素连接酶复合物，进而引导信号相关蛋白进行蛋白酶体降解）。SH2结构域特异性地与磷酸化的JAK激酶和细胞因子受体链（例如IL-2、IL-3、IL-5和IL-7受体）相互作用，从而建立一种抑制JAK-STAT信号通路过度激活的反馈机制。 CISH在免疫细胞信号传导中发挥负向检查点的作用，尤其通过调节T调节细胞（Tregs）、自然杀伤（NK）细胞和CD8+ T细胞的激活阈值来实现。通过这种抑制作用，CISH能够精细调节效应细胞的反应，维持免疫耐受，并防止慢性抗原刺激期间的免疫过度激活。在造血调控方面，CISH能够抑制促红细胞生成素（EPO）驱动的STAT5激活，从而限制红系细胞的过度增殖。CISH表达失调与抗肿瘤免疫受损相关，例如脾边缘区淋巴瘤；而CISH的基因多态性则通过改变细胞因子反应性，使个体易患结核病和疟疾等传染病。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37628937/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7796808/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%