Cyclin A1 + A2 Antibody (Rabbit mAb) [N12H18]

目录号: F2458

    抗体应用: 反应性:
    • Lane 1: Hela, Lane 2: HepG2
    规格 价格 库存 购买数量
    20uL 790 现货
    50uL 1240 现货
    100uL 1990 现货
    100uL*2 3790 现货

    400-668-6834

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    使用信息

    稀释比例
    1:1000
    1:70
    1:2000
    抗体应用
    WB, IP, IHC
    反应性
    Human
    抗体类型
    Rabbit Monoclonal Antibody
    储存液配方
    PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
    储存条件(自收到货起)
    -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
    预测分子量
    实际分子量
    52 kDa
    52 kDa
    *为什么预测分子量和实际分子量会有不同?
    以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同:翻译后修饰(磷酸化/糖基化);剪接变体和异构体;相对电荷;多聚体。
    阳性对照 Human colon cancer tissue; Human testis tissue; Recombinant Human Cyclin A1 fragment; Full-length Human Cyclin A2 recombinant protein; HeLa cells; K562 cells; HepG2 cells
    阴性对照

    实验方法

    WB
    实验步骤:
     
    样品制备
    1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆或置于冰上超声裂解样品,静置30 min。
    2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声处理以裂解细胞,并在冰上孵育 30 分钟。
    3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声处理以裂解细胞,并在冰上孵育 30 分钟。
    4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
    5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
    6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
     
    电泳分离
    1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
    2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
     
    转膜
    1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
    2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
    3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
    4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
    湿转法参考条件:200 mA, 120 min
    (注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
     
    封闭
    1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
    2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
    3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    抗体孵育
    1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
    2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
    3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
    4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    显色
    1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
    2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
     
    IHC
    实验步骤:
     
    脱蜡/补液
    1. 脱蜡/水合切片:
    2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次,每次 5 分钟。
    3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次,每次 10 分钟。
    4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次,每次 10 分钟。
    5. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    6.抗原修复:对于柠檬酸盐:将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中,在微波炉中加热,直至开始沸腾; 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
     
    染色
    1. 用 dH2O 清洗切片 3 次,每次 5 分钟。
    2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
    3. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
    5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
    6. 除去封闭液,并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
    7. 去除抗体溶液,用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
    9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
    11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
    12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
    13. 如果需要,用苏木精复染切片。
    14. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    15. 切片脱水:95%乙醇孵育切片两次,每次 10 秒; 在 100% 乙醇中重复,孵育切片两次,每次 10 秒; 在二甲苯中重复,孵育切片两次,每次 10 秒。
    16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
     

    Datasheet & SDS

    生物描述

    特异性
    Cyclin A1 + A2 Antibody (Rabbit mAb) [N12H18] 可检测内源性 Cyclin A1 + A2 总蛋白水平。
    蛋白定位
    细胞核,细胞质
    Uniprot ID
    P78396, P20248
    克隆号
    N12H18
    别名
    Cyclin-A1 | CCNA1 | CCN1 | CCNA | CCNA2 | Cyclin-A2 | Cyclin-A | Cyclin A
    背景
    细胞周期蛋白A1和细胞周期蛋白A2是A型细胞周期蛋白,它们是细胞周期蛋白依赖性激酶(CDK)的调节亚基,共同协调生殖细胞减数分裂和体细胞有丝分裂的关键转换。细胞周期蛋白A1在雄性生殖细胞中表达受限,而细胞周期蛋白A2在增殖的体细胞组织中广泛表达。两种蛋白都具有特征性的细胞周期蛋白盒折叠结构,该结构提供了与CDK结合的界面,但它们的表达时间和结合伴侣不同:细胞周期蛋白A1在粗线期晚期和双线期精母细胞中与Cdk2和Cdk1结合,并在第一次减数分裂前后出现;而细胞周期蛋白A2在精原细胞和细线期前精母细胞中含量丰富,主要与生殖细胞中的Cdk2结合,这反映了它们在减数分裂起始和减数分裂过程中不同的功能。在雄性减数分裂过程中,细胞周期蛋白A1是细胞从G2期进入减数分裂I中期所必需的;靶向破坏 Ccna1 基因会导致精子发生停滞在减数分裂 I 期之前,Cdc2 激酶激活缺陷,尽管保留了 B 型细胞周期蛋白,但无法产生活性 M 期促进因子,并且细胞周期蛋白 A1–Cdc2/Cdk2 复合物可以磷酸化 Cdc25A 和 Cdc25C 磷酸酶,表明细胞周期蛋白 A1 参与了一个放大环路,该环路驱动 MPF 激活和精母细胞中的 G2/M 期转换。睾丸免疫定位研究表明,细胞周期蛋白 A1 蛋白在第一次减数分裂之前或期间出现在生殖细胞中,然后消失;而细胞周期蛋白 A2 在进入减数分裂途径的精原细胞和前细线期精母细胞中表达较早;在生殖细胞裂解液中可以检测到细胞周期蛋白 A1 依赖性激酶对组蛋白 H1 的活性,这支持了细胞周期蛋白 A1-CDK 复合物在染色质凝聚和减数分裂染色体分离中的作用。相比之下,细胞周期蛋白A2在体细胞S期开始时合成,并与Cdk2结合,通过磷酸化CDC6和MCM蛋白等许可因子来启动和维持DNA复制并防止重复复制。随后,A2与Cdk1结合,促进G2/M期进程,并触发细胞周期蛋白B1-Cdk1复合物的激活,进而驱动染色质凝聚和核膜破裂。这使得细胞周期蛋白A2成为有丝分裂周期中G1/S期和G2/M期转换的关键调控因子。在小鼠发育和早期胚胎发生过程中,细胞周期蛋白A2在分裂细胞中普遍表达,并控制DNA复制和纺锤体组装;而细胞周期蛋白A1的表达则局限于精母细胞、白血病细胞和某些有丝分裂后多纤毛细胞。这表明,它们不同的表达模式和CDK伴侣的使用决定了A型细胞周期蛋白在生殖细胞周期和体细胞周期中的功能特化。遗传学和功能研究表明,细胞周期蛋白A1对男性生育能力至关重要,细胞周期蛋白A1单倍体不足会导致精子数量和质量下降;而细胞周期蛋白A2敲除则会导致胚胎致死,因为有丝分裂增殖失败。这强调了细胞周期蛋白A1是减数分裂的关键调控因子,而细胞周期蛋白A2对于一般的细胞分裂是不可或缺的。细胞周期蛋白A1和A2均与肿瘤生物学密切相关:细胞周期蛋白A2在多种癌症中经常过表达,其高表达水平与不良预后相关,并可能通过改变S期和G2/M期调控而导致基因组不稳定;细胞周期蛋白A1在某些白血病和实体瘤中表达,反映了恶性肿瘤中生殖系细胞周期调控因子的失调。 A 型细胞周期蛋白 A1 和 A2 构成了一对结构相关的 CDK 伙伴,它们不同的表达域和激酶相互作用协调减数分裂和有丝分裂中的 G1/S 和 G2/M 转换,其中细胞周期蛋白 A1 驱动雄性生殖细胞中的 MPF 激活和第一次减数分裂,而细胞周期蛋白 A2 控制体细胞谱系中的 S 期进入、DNA 复制保真度和有丝分裂开始,这使得这对细胞周期蛋白成为研究细胞周期控制、配子发生和癌症的重要靶标。
    参考文献
    • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21630154/
    • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10068472/

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