GLI-2 Antibody (Mouse mAb) [H16L16]
目录号: F3486
抗体应用：
反应性：
-
Lane 1: U2OS
操作要点
WB
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。
建议一抗稀释比: 1:100
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。
建议一抗稀释比: 1:100
使用信息
| 稀释比例 |
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| 抗体应用 |
|---|
| WB, IP, IHC, IF, ELISA |
| 反应性 |
|---|
| Mouse, Human, Rat |
| 抗体类型 |
|---|
| Mouse Monoclonal Antibody |
| 储存液配方 |
|---|
| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3 |
| 储存条件(自收到货起) |
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| -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
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预测分子量
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168 kDa
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| 阳性对照 | Human gall bladder tissue; K-562 cells; U-2 OS cells; A549 cells; TF-1 cells; Hep G2 cells |
|---|---|
| 阴性对照 |
实验方法
| WB |
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实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声处理以裂解细胞，并在冰上孵育 30 分钟。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 120 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:100），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IF |
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实验步骤：
样品准备
1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。
2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。
3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。
4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。
固定
1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
通透
1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。
（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。）
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
封闭
添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）
注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。
免疫荧光染色（第一天）
1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。
2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。
免疫荧光染色（第二天）
1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。
3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光 孵育 5~10 min。
5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。
封片
1. 抗荧光淬灭封片剂封片。
2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。
3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。
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| IHC |
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实验步骤：
脱蜡/补液
1. 脱蜡/水合切片：
2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。
3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。
4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。
5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾； 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
染色
1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。
2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
13. 如果需要，用苏木精复染切片。
14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒； 在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒； 在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。
16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
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生物描述
| 特异性 |
|---|
| GLI-2 Antibody (Mouse mAb) [H16L16] 可检测内源性 GLI-2 总蛋白水平。 |
| 蛋白定位 |
|---|
| 细胞突起，纤毛，细胞质，细胞核 |
| Uniprot ID |
|---|
| P10070 |
| 克隆号 |
|---|
| H16L16 |
| 别名 |
|---|
| CJS | GLI family zinc finger 2 | GLI family zinc finger protein 2 | GLI-Kruppel family member GLI2 | GLI2 | glioma-associated oncogene family zinc finger 2 | HPE9 | oncogene GLI2 | PHS2 | Tax helper protein | tax helper protein 1 | tax helper protein 2 | tax-responsive element-2 holding protein | tax-responsive element-25-bp sequence binding protein | THP | THP1 | THP2 | Zinc finger protein GLI2 |
| 背景 |
|---|
| GLI2 是 GLI 家族的锌指转录因子，作为 Sonic Hedgehog (Shh) 信号通路的主要效应因子，在胚胎模式形成和疾病过程中，将通路活性整合到依赖于特定环境的转录程序中。该蛋白包含一个带有抑制元件的 N 端调控区、一个识别靶启动子和增强子中 GLI 共有基序的 Krüppel 样锌指 DNA 结合域，以及一个活性受多位点磷酸化和蛋白酶体依赖性加工调控的 C 端转录激活区。在缺乏 Hedgehog 配体的情况下，蛋白激酶 A 与酪蛋白激酶 1 和 GSK3 共同磷酸化 GLI2 C 端区域的丝氨酸簇，从而形成 SCF-βTrCP 泛素连接酶的结合位点；这促进了部分蛋白水解，产生较短的GLI2抑制因子，同时也驱动全长GLI2的降解，从而维持较低的激活因子水平并限制Hedgehog靶基因的表达。Hedgehog通路激活可阻止这一磷酸化级联反应，稳定全长GLI2，并使其作为转录激活因子在细胞核内积累，进而上调参与增殖、命运决定和组织形态发生的经典Hedgehog靶基因；Smoothened下游保守位点的DYRK2依赖性磷酸化提供了额外的正向输入，增强了GLI2在特定发育过程中（例如骨骼形成）的激活功能，从而建立了一个逐步激活机制，该机制结合了PKA介导的抑制解除和DYRK2介导的刺激性磷酸化。 Gli2对于腹侧神经管、毛囊和丘脑皮质投射的正常发育至关重要，其功能与Gli3仅部分重叠，而Gli3更倾向于抑制功能，这凸显了GLI2在许多脊椎动物Hedgehog信号通路中作为主要激活因子的作用。人类GLI2功能缺失变异与全前脑畸形谱系及相关中线缺陷有关，常伴有垂体和颅面畸形，这与前脑和面部发育过程中Shh-GLI2信号通路受损相一致。此外，由配体依赖性或非经典信号通路（包括TGF-β/SMAD信号通路）驱动的GLI2活性升高，会促进多种癌症（如基底细胞癌和口腔鳞状细胞癌）的增殖和侵袭行为。 GLI2 作为一个精细调节的转录开关，其活性由组合磷酸化“密码”决定，并受蛋白水解调节，将上游 Hedgehog 和协同通路连接到控制增殖、模式形成和肿瘤进展的基因网络。 |
| 参考文献 |
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