Glutathione Peroxidase 1 Antibody [M21J11]

目录号: F4831

抗体应用：反应性：Human

Lane 1: THP1, Lane 2: THP1 (KO GPX1), Lane 3: HL60, Lane 4: Rat liver

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

WB
湿转参考条件：200 mA, 60 min。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 - 1:10000 IHC1:100 - 1:250 FCM1:250

抗体应用
WB, IHP, FCM

反应性
Human

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量实际分子量
22 kDa 22 kDa
^*为什么预测分子量和实际分子量会有不同？以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同：翻译后修饰（磷酸化/糖基化）；剪接变体和异构体；相对电荷；多聚体。

阳性对照	Rat lung tissue; Human breast carcinoma tissue; Human fetal liver tissue; Rat liver tissue; THP-1 cells; HAP1 cells; HL60 cells; HEK-293T cells; SH SY5Y cells
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 60 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Glutathione Peroxidase 1 Antibody [M21J11] 可检测内源性 Glutathione Peroxidase 1 总蛋白水平。

蛋白定位
细胞质，线粒体

Uniprot ID
P07203

克隆号
M21J11

别名
Glutathione peroxidase 1; GPx-1; GSHPx-1; Cellular glutathione peroxidase; Phospholipid-hydroperoxide glutathione peroxidase GPX1; GPX1

背景
谷胱甘肽过氧化物酶1 (GPx1) 是细胞内主要的硒蛋白抗氧化酶，它利用还原型谷胱甘肽 (GSH) 作为电子供体，将过氧化氢和脂质氢过氧化物还原为水和醇，从而保护细胞免受氧化损伤；生成的氧化型谷胱甘肽二硫化物 (GSSG) 则由谷胱甘肽还原酶回收利用。GPx1 是由四个相同的 22–23 kDa 亚基组成的同源四聚体，每个亚基均由 GPX1 基因（位于 3p21.31 染色体）编码，并通过 mRNA 3′ 非翻译区 (UTR) 中 SECIS 元件控制的 UGA 密码子重编码，将硒代半胱氨酸 (Sec) 整合到活性位点。催化四联体（Sec-Gln-Trp-Asn）位于相邻亚基保守的精氨酸和赖氨酸残基形成的口袋内，促进GSH结合，并实现乒乓式双底物动力学，从而高效地进行过氧化物解毒。胞质和线粒体中的GPx1均与超氧化物歧化酶（SOD）和过氧化氢酶协同作用，中和活性氧（ROS），维持氧化还原稳态，防止脂质过氧化、蛋白质羰基化、DNA损伤以及异常的H₂O₂介导的信号传导，这些损伤会影响细胞凋亡、生长因子反应、胰岛素敏感性和Nrf2依赖性基因表达。 GPx1 缺乏与心血管疾病（动脉粥样硬化、内皮功能障碍）、神经退行性疾病（如在卒中/创伤性脑损伤中发挥神经保护作用）以及癌症（其作用可能促进肿瘤发生或调节风险，这取决于 Pro198Leu 多态性）相关。GPx1 也是硒状态的关键生物标志物，其转录受 Nrf2、NF-κB 和 p53 的调控。

背景

谷胱甘肽过氧化物酶1 (GPx1) 是细胞内主要的硒蛋白抗氧化酶，它利用还原型谷胱甘肽 (GSH) 作为电子供体，将过氧化氢和脂质氢过氧化物还原为水和醇，从而保护细胞免受氧化损伤；生成的氧化型谷胱甘肽二硫化物 (GSSG) 则由谷胱甘肽还原酶回收利用。GPx1 是由四个相同的 22–23 kDa 亚基组成的同源四聚体，每个亚基均由 GPX1 基因（位于 3p21.31 染色体）编码，并通过 mRNA 3′ 非翻译区 (UTR) 中 SECIS 元件控制的 UGA 密码子重编码，将硒代半胱氨酸 (Sec) 整合到活性位点。催化四联体（Sec-Gln-Trp-Asn）位于相邻亚基保守的精氨酸和赖氨酸残基形成的口袋内，促进GSH结合，并实现乒乓式双底物动力学，从而高效地进行过氧化物解毒。胞质和线粒体中的GPx1均与超氧化物歧化酶（SOD）和过氧化氢酶协同作用，中和活性氧（ROS），维持氧化还原稳态，防止脂质过氧化、蛋白质羰基化、DNA损伤以及异常的H₂O₂介导的信号传导，这些损伤会影响细胞凋亡、生长因子反应、胰岛素敏感性和Nrf2依赖性基因表达。 GPx1 缺乏与心血管疾病（动脉粥样硬化、内皮功能障碍）、神经退行性疾病（如在卒中/创伤性脑损伤中发挥神经保护作用）以及癌症（其作用可能促进肿瘤发生或调节风险，这取决于 Pro198Leu 多态性）相关。GPx1 也是硒状态的关键生物标志物，其转录受 Nrf2、NF-κB 和 p53 的调控。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21087145/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19376195/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%