Phospho-LKB1 (Ser428) Antibody [H12K23]

目录号: F0399

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat, Monkey

Lane 1: L929, Lane 2: L929 (TPA and UV treated), Lane 3: COS-7, Lane 4: COS-7 (TPA and UV treated)

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000

抗体应用
WB

反应性
Human, Mouse, Rat, Monkey

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
54 kDa

阳性对照	Caki cells (TPA and UV treated); L929 cells (TPA and UV treated); COS cells (TPA and UV treated); NBT-II cells (TPA and UV treated)
阴性对照	Caki cells; NBT-II cells

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Phospho-LKB1 (Ser428) Antibody [H12K23] 仅识别 Ser428 处磷酸化的内源性 LKB1 蛋白水平。

蛋白定位
细胞质，内膜系统，线粒体，细胞核

Uniprot ID
Q15831

克隆号
H12K23

别名
STK11; Serine/threonine-protein kinase STK11; EC:2.7.11.1; Liver kinase B1 (LKB1; hLKB1); Renal carcinoma antigen NY-REN-19; LKB1; PJS.

背景
磷酸化LKB1 (Ser428) 代表丝氨酸/苏氨酸肿瘤抑制激酶LKB1 (STK11) 的活化形式，它与STRADα/β和MO25形成异源三聚体复合物，磷酸化并激活Thr172位点的AMPK及相关激酶，从而维持细胞极性、能量稳态和生长调控。LKB1包含一个N端核定位结构域、一个具有保守ATP结合赖氨酸和激活环基序的中央激酶结构域，以及一个C端非激酶区域，该区域包含位于PKCζ共有序列中的Ser428以及Ser325和Thr363等调控残基。柔性环促进假激酶STRAD的结合，从而实现变构激活。在二甲双胍治疗、氧化应激或能量耗竭等信号刺激下，PKCζ 对 Ser428 的磷酸化可触发 LKB1 从细胞核输出至胞质，增强 STRAD/MO25 复合物的稳定性，提高其催化活性，并促进 AMPK Thr172 的强磷酸化，从而驱动分解代谢、自噬，并抑制 mTORC1 和 GSK3β。这种修饰可解除 LKB1 的核滞留，促进 LKB1 与 AMPK 的结合，通过稳定 PTEN 抑制 Akt 信号通路，并在营养胁迫下微调细胞凋亡反应。Ser428 突变为丙氨酸可阻断 LKB1 的转位，消除二甲双胍增强的 AMPK 激活，并损害通过 MARK 和 Sad 激酶介导的下游极性信号传导。 LKB1 Ser428 磷酸化失调与 Peutz-Jeghers 综合征和各种癌症（包括肺癌和黑色素瘤）有关，因为它会破坏能量感知和生长控制；而过度激活与糖尿病中的内皮功能障碍有关；低激活则通过不受控制的细胞增殖促进肿瘤发生。

背景

磷酸化LKB1 (Ser428) 代表丝氨酸/苏氨酸肿瘤抑制激酶LKB1 (STK11) 的活化形式，它与STRADα/β和MO25形成异源三聚体复合物，磷酸化并激活Thr172位点的AMPK及相关激酶，从而维持细胞极性、能量稳态和生长调控。LKB1包含一个N端核定位结构域、一个具有保守ATP结合赖氨酸和激活环基序的中央激酶结构域，以及一个C端非激酶区域，该区域包含位于PKCζ共有序列中的Ser428以及Ser325和Thr363等调控残基。柔性环促进假激酶STRAD的结合，从而实现变构激活。在二甲双胍治疗、氧化应激或能量耗竭等信号刺激下，PKCζ 对 Ser428 的磷酸化可触发 LKB1 从细胞核输出至胞质，增强 STRAD/MO25 复合物的稳定性，提高其催化活性，并促进 AMPK Thr172 的强磷酸化，从而驱动分解代谢、自噬，并抑制 mTORC1 和 GSK3β。这种修饰可解除 LKB1 的核滞留，促进 LKB1 与 AMPK 的结合，通过稳定 PTEN 抑制 Akt 信号通路，并在营养胁迫下微调细胞凋亡反应。Ser428 突变为丙氨酸可阻断 LKB1 的转位，消除二甲双胍增强的 AMPK 激活，并损害通过 MARK 和 Sad 激酶介导的下游极性信号传导。 LKB1 Ser428 磷酸化失调与 Peutz-Jeghers 综合征和各种癌症（包括肺癌和黑色素瘤）有关，因为它会破坏能量感知和生长控制；而过度激活与糖尿病中的内皮功能障碍有关；低激活则通过不受控制的细胞增殖促进肿瘤发生。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18250273/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19274086/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%