Phospho-PLCγ1 (Tyr783) Antibody [C6N17]

目录号: F0752

抗体应用：反应性：Human, Mouse

Lane 1: NIH/3T3, Lane 2: NIH/3T3 (HPDGF-BB, 10 ng/ml, 15 min)

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

WB
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:50 FCM1:100 - 1:400

抗体应用
WB, IP, FCM

反应性
Human, Mouse

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
155 kDa

阳性对照	NIH/3T3 cell (hPDGF-BB treated); A-431 cell (hEGF treated)
阴性对照	NIH/3T3 cell; A-431 cell

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Phospho-PLCγ1 (Tyr783) Antibody [C6N17] 仅识别 Tyr783 处磷酸化的内源性 PLCγ1 蛋白水平。

蛋白定位
细胞突起

Uniprot ID
P19174

克隆号
C6N17

别名
phospholipase-C; phospholipase-C-gamma; PLC; PLC-g1; PLC-gamma; PLC-gamma-1; PLCg; PLCg1; PLCgamma; PLCgamma1

背景
磷酸化PLCγ1 (Tyr783) 代表PLCγ1的活化形式，PLCγ1是一种受体近端信号酶，可水解磷脂酰肌醇4,5-二磷酸 (PIP₂) 生成第二信使IP₃和DAG，从而激活蛋白激酶C (PKC) 并动员细胞内Ca²⁺。PLCγ1的结构由一个催化核心（X-Y结构域）组成，该核心受一个自抑制性X-Y连接体调控，该连接体包含多个结构域：普莱克底物同源物 (PH)、Src同源物2 (nSH2、cSH2) 和SH3。在基础状态下，cSH2结构域与催化核心的C2结构域相互作用，从而物理阻断膜通道。 PLCγ1广泛表达于哺乳动物组织中，尤其在造血细胞和上皮细胞中，它在受体酪氨酸激酶、免疫受体和生长因子受体下游传递信号。受体相关激酶介导的Tyr783位点磷酸化是解除自身抑制的标志性事件：磷酸化的Tyr783位点作为分子内配体与cSH2结构域结合，将其从催化核心置换出来，并暴露出膜插入和催化所需的疏水嵴。这种磷酸化至关重要，因为它将PLCγ1锁定在其活性构象上，稳定其与质膜的相互作用，并确保受体信号的稳定传递。磷酸化PLCγ1失调与肿瘤发生和异常免疫激活有关。

背景

磷酸化PLCγ1 (Tyr783) 代表PLCγ1的活化形式，PLCγ1是一种受体近端信号酶，可水解磷脂酰肌醇4,5-二磷酸 (PIP₂) 生成第二信使IP₃和DAG，从而激活蛋白激酶C (PKC) 并动员细胞内Ca²⁺。PLCγ1的结构由一个催化核心（X-Y结构域）组成，该核心受一个自抑制性X-Y连接体调控，该连接体包含多个结构域：普莱克底物同源物 (PH)、Src同源物2 (nSH2、cSH2) 和SH3。在基础状态下，cSH2结构域与催化核心的C2结构域相互作用，从而物理阻断膜通道。 PLCγ1广泛表达于哺乳动物组织中，尤其在造血细胞和上皮细胞中，它在受体酪氨酸激酶、免疫受体和生长因子受体下游传递信号。受体相关激酶介导的Tyr783位点磷酸化是解除自身抑制的标志性事件：磷酸化的Tyr783位点作为分子内配体与cSH2结构域结合，将其从催化核心置换出来，并暴露出膜插入和催化所需的疏水嵴。这种磷酸化至关重要，因为它将PLCγ1锁定在其活性构象上，稳定其与质膜的相互作用，并确保受体信号的稳定传递。磷酸化PLCγ1失调与肿瘤发生和异常免疫激活有关。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35367415/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31889510/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%