Phospho-TAK1 (Thr184/187) Antibody [G4C5]

目录号: F0402

抗体应用：反应性：Human

Lane 1: 293 IL-1R cell, Lane 2: 293 IL-1R cell (IL-1, 10 min)

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000

抗体应用
WB

反应性
Human

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
82 kDa

阳性对照	293 IL-1R cells (IL-1, 10min); HeLa cells (hIL-1β, 10 min)
阴性对照	293 IL-1R cells

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Phospho-TAK1 (Thr184/187) Antibody [G4C5] 仅识别 Thr184/187 处磷酸化的内源性 TAK1 蛋白水平。

蛋白定位
细胞膜，细胞质，内膜系统

Uniprot ID
O43318

克隆号
G4C5

别名
Mitogen-activated protein kinase kinase kinase 7; Transforming growth factor-beta-activated kinase 1 (TGF-beta-activated kinase 1); MAP3K7; TAK1

背景
磷酸化TAK1 (Thr184/187) 是丝氨酸/苏氨酸激酶TAK1 (MAP3K7) 的活化形式，其特征是N端激酶结构域活化T环上的双重磷酸化。这种修饰由TAB1结合诱导，TAB1的结合解除了TAK1的自身抑制并促进了自身磷酸化，从而稳定了TAK1的活性构象，使其能够传递先天免疫和应激信号。磷酸化位点位于保守的DFG和APE基序之间，确保了ATP的精确结合和底物的可及性。TAB2和TAB3通过从TRAF6募集泛素链进一步增强TAK1的活化，从而放大信号转导。活化的磷酸化TAK1是TNF-α、IL-1和TGF-β信号通路的核心节点，它直接磷酸化IKKβ，触发NF-κB核转位和促炎细胞因子的产生，同时激活MKK4/6/7，进而驱动JNK和p38 MAPK级联反应，调控细胞凋亡、存活和炎症反应。Thr184/187位点的磷酸化对于IL-1诱导的NF-κB和AP-1协同作用以及IL-6的最佳表达至关重要，因为这些位点的突变即使在TAB1存在的情况下也会消除下游的激活，而磷酸化模拟突变体则会过度激活这些通路。这些残基上的过度活跃的磷酸化 TAK1 会维持类风湿性关节炎、炎症性肠病和癌症等疾病中的慢性 NF-κB 信号传导，而选择性抑制 Thr184/187 磷酸化会破坏 TAK1 信号体组装，从而抑制炎症细胞因子风暴和肿瘤进展。

背景

磷酸化TAK1 (Thr184/187) 是丝氨酸/苏氨酸激酶TAK1 (MAP3K7) 的活化形式，其特征是N端激酶结构域活化T环上的双重磷酸化。这种修饰由TAB1结合诱导，TAB1的结合解除了TAK1的自身抑制并促进了自身磷酸化，从而稳定了TAK1的活性构象，使其能够传递先天免疫和应激信号。磷酸化位点位于保守的DFG和APE基序之间，确保了ATP的精确结合和底物的可及性。TAB2和TAB3通过从TRAF6募集泛素链进一步增强TAK1的活化，从而放大信号转导。活化的磷酸化TAK1是TNF-α、IL-1和TGF-β信号通路的核心节点，它直接磷酸化IKKβ，触发NF-κB核转位和促炎细胞因子的产生，同时激活MKK4/6/7，进而驱动JNK和p38 MAPK级联反应，调控细胞凋亡、存活和炎症反应。Thr184/187位点的磷酸化对于IL-1诱导的NF-κB和AP-1协同作用以及IL-6的最佳表达至关重要，因为这些位点的突变即使在TAB1存在的情况下也会消除下游的激活，而磷酸化模拟突变体则会过度激活这些通路。这些残基上的过度活跃的磷酸化 TAK1 会维持类风湿性关节炎、炎症性肠病和癌症等疾病中的慢性 NF-κB 信号传导，而选择性抑制 Thr184/187 磷酸化会破坏 TAK1 信号体组装，从而抑制炎症细胞因子风暴和肿瘤进展。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18617512/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25028512/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%