ACSF2 Antibody [F15E3]

目录号: F4977

抗体应用：反应性：Human

Lane 1: Jurkat

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
400-668-6834 info@selleck.cn

使用信息

稀释比例
WB1:2000-1:10000 FCM1:8000

抗体应用
WB, FCM, ELISA

反应性
Human

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量实际分子量
68 kDa 51-71 kDa
^*为什么预测分子量和实际分子量会有不同？以下原因可能会导致蛋白分子量与预测不同：翻译后修饰（磷酸化/糖基化）；剪接变体和异构体；相对电荷；多聚体。

阳性对照	Jurkat cells; SGC-7901 cells; A549 cells
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:2000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:2000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
ACSF2 Antibody [F15E3] 可检测内源性 ACSF2 总蛋白水平。

蛋白定位
线粒体

Uniprot ID
Q96CM8

克隆号
F15E3

别名
ACSF2; Medium-chain acyl-CoA ligase ACSF2, mitochondrial; UNQ493/PRO1009

背景
ACSF2（酰基辅酶A合成酶家族成员2）是一种线粒体基质酶，催化中链脂肪酸活化为酰基辅酶A硫酯，这是β-氧化和维持脂质稳态的关键步骤。它具有典型的AMP结合超家族结构，包括一个在导入线粒体后被切割的N端线粒体靶向序列、一个负责Mg-ATP结合的ATP结合结构域、一个形成脂肪酸相互作用底物结合裂隙的A10样亚结构域，以及一个能够实现必需的同源二聚化的C端二聚化结构域。ACSF2通过两步乒乓机制发挥作用：首先ATP硫酯化形成酰基-AMP中间体，随后辅酶A硫醇发生亲核取代反应生成酰基辅酶A和AMP，该反应对中链脂肪酸具有显著的特异性。该酶通过促进中链脂肪酸的CPT1非依赖性输入，绕过肉碱穿梭的限制，从而支持线粒体β-氧化。ACSF2缺乏会导致丙二酸和甲基丙二酸尿症（CMAMMA），进而由于脂肪酸分解代谢受损和蛋白质脂酰化不足（而蛋白质脂酰化对于线粒体酶复合物的稳定性至关重要）而导致二羧酸的积累。ACSF2的体细胞过表达与非酒精性脂肪性肝病和肝细胞癌相关，其机制是通过肝脏极低密度脂蛋白（VLDL）分泌失调和脂滴积累增加。

背景

ACSF2（酰基辅酶A合成酶家族成员2）是一种线粒体基质酶，催化中链脂肪酸活化为酰基辅酶A硫酯，这是β-氧化和维持脂质稳态的关键步骤。它具有典型的AMP结合超家族结构，包括一个在导入线粒体后被切割的N端线粒体靶向序列、一个负责Mg-ATP结合的ATP结合结构域、一个形成脂肪酸相互作用底物结合裂隙的A10样亚结构域，以及一个能够实现必需的同源二聚化的C端二聚化结构域。ACSF2通过两步乒乓机制发挥作用：首先ATP硫酯化形成酰基-AMP中间体，随后辅酶A硫醇发生亲核取代反应生成酰基辅酶A和AMP，该反应对中链脂肪酸具有显著的特异性。该酶通过促进中链脂肪酸的CPT1非依赖性输入，绕过肉碱穿梭的限制，从而支持线粒体β-氧化。ACSF2缺乏会导致丙二酸和甲基丙二酸尿症（CMAMMA），进而由于脂肪酸分解代谢受损和蛋白质脂酰化不足（而蛋白质脂酰化对于线粒体酶复合物的稳定性至关重要）而导致二羧酸的积累。ACSF2的体细胞过表达与非酒精性脂肪性肝病和肝细胞癌相关，其机制是通过肝脏极低密度脂蛋白（VLDL）分泌失调和脂滴积累增加。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36160020/ https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2022.03.28.486105v1.abstract

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%