Phospho-STAT3 (Ser727) Antibody [J17G14]

目录号: F4695

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat, Monkey

Lane 1: U266, Lane 2: U266 (hIFN-α1, 50ng/ml, 15 min), Lane 3: Hela, Lane 4: Hela (hTNF-α, 20ng/ml, 30 min)

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:200

抗体应用
WB, IP

反应性
Human, Mouse, Rat, Monkey

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
86 kDa

阳性对照	293 IL-1R cells (IL-1, 10 min); HeLa cells (hIL-1β, 10 min)
阴性对照	293 IL-1R cells

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Phospho-STAT3 (Ser727) Antibody [J17G14] 仅识别 Ser727 处磷酸化的内源性 STAT3 蛋白水平。

蛋白定位
细胞膜，细胞质，内膜系统

Uniprot ID
O43318

克隆号
J17G14

别名
Signal transducer and activator of transcription 3; Acute-phase response factor; STAT3; APRF

背景
磷酸化STAT3 (Ser727) 是STAT3转录因子的丝氨酸磷酸化形式，它在细胞因子和生长因子信号传导的下游被激活。这种修饰发生在C端转录激活结构域内，具体位于Pro715附近的柔性环中，并在STAT3的初始Tyr705磷酸化、二聚化和核转位后，由MAPK和mTOR通路介导。Ser727磷酸化通过募集TC45磷酸酶加速Tyr705的去磷酸化，从而实现快速的激活-失活循环，这对于白细胞介素-6信号传导至关重要。这种磷酸化事件会破坏二聚体之间的相互作用，并削弱C端尾部的分子间和分子内相互作用，从而促进不依赖于CRM1的核输出，并阻止STAT3信号的持续激活。 Ser727磷酸化对STAT3的动态调控确保了靶基因表达（包括socs3和saa1等基因）的精确时间控制。S727A突变或N端标记等改变会破坏这种调控循环，导致STAT3在细胞核内积累并延迟其重新激活。在癌症中，磷酸化STAT3（Ser727）可以独立于Tyr705磷酸化驱动不同的基因表达程序，例如在透明细胞肾细胞癌中观察到的情况。而Ser727磷酸化的慢性过度激活则通过NF-κB和AP-1信号通路的异常相互作用，促进炎症和自身免疫性疾病的发生。

背景

磷酸化STAT3 (Ser727) 是STAT3转录因子的丝氨酸磷酸化形式，它在细胞因子和生长因子信号传导的下游被激活。这种修饰发生在C端转录激活结构域内，具体位于Pro715附近的柔性环中，并在STAT3的初始Tyr705磷酸化、二聚化和核转位后，由MAPK和mTOR通路介导。Ser727磷酸化通过募集TC45磷酸酶加速Tyr705的去磷酸化，从而实现快速的激活-失活循环，这对于白细胞介素-6信号传导至关重要。这种磷酸化事件会破坏二聚体之间的相互作用，并削弱C端尾部的分子间和分子内相互作用，从而促进不依赖于CRM1的核输出，并阻止STAT3信号的持续激活。 Ser727磷酸化对STAT3的动态调控确保了靶基因表达（包括socs3和saa1等基因）的精确时间控制。S727A突变或N端标记等改变会破坏这种调控循环，导致STAT3在细胞核内积累并延迟其重新激活。在癌症中，磷酸化STAT3（Ser727）可以独立于Tyr705磷酸化驱动不同的基因表达程序，例如在透明细胞肾细胞癌中观察到的情况。而Ser727磷酸化的慢性过度激活则通过NF-κB和AP-1信号通路的异常相互作用，促进炎症和自身免疫性疾病的发生。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22233524/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37945711/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%